+8 (916) 786-78-28 с 10.00 до 22.00 ежедневно

Меню

Трихофития у собак фото: как определить в домашних условиях, лечение, признаки

Трихофития (лишай) собак | Круглосуточная ветеринарная клиника Фауна

Трихофития собак, больше известная как стригущий лишай, является достаточно распространённым заболеванием, которое чаще всего наблюдается у животных со сниженным иммунитетом. В отличие от многих других болезней собак, не передающихся человеку, трихофития может поражать не только животных, но и их владельцев. Именно поэтому при малейшем подозрении на заболевание, необходимо обратиться к специалистам, способным выполнить диагностику и назначить лечение.

Трихофития собак – возбудитель, носители и источник заболевания

Стригущий лишай относится к заболеваниям, вызываемым патогенными грибками рода Trichophyton. При попадании на кожу человека или животного Trichophyton проникает в эпидермис и начинает размножаться, поражая волосяные луковицы. Благоприятными условиями для скорейшего роста грибков являются: сниженный иммунитет, повреждения кожного покрова, сухость кожи и т.д.

К носителям и источникам заболевания можно отнести мышей, крыс и других, повсеместно распространённых, грызунов.

Именно поэтому трихофития собак встречается практически по всему миру. В нашей стране, где количество бездомных животных чрезвычайно высоко, дополнительным источником заболевания являются и бродячие собаки.

Симптомы и диагностика стригущего лишая

Основной признак трихофитии собак – это округлой формы лысины, появляющиеся чаще всего на морде и шее животного, а позже распространяющиеся по всему телу. Поражённые участки кожи покрываются корочками серого цвета, шелушатся и зудят. В особо тяжёлых случаях стригущий лишай может вызывать нагноение волосяных мешочков, что приводит к скоплению большого количества гноя под поверхностью корочки.

Несмотря на достаточно приметную клиническую картину заболевания, диагностировать трихофитию собак может только ветеринарный врач. Для того чтобы поставить правильный диагноз проводят осмотр поражённых участков в ультрафиолетовом свете, а также берут соскоб кожи для микроскопического исследования на наличие возбудителей заболевания.

Лечение стригущего лишая

Ещё несколько десятилетий назад собаку, заразившуюся лишаём, рекомендовали усыпить. К счастью, современные методы лечения животных позволяют успешно справиться с возбудителем болезни. В том случае, если трихофития собак имеет ярко выраженную локализованную форму (до 5 поражённых участков небольшого размера), лечение может быть местным – с помощью мазей и специальных растворов, содержащих антибиотики. Если же форма заболевания генерализованная, необходимо использовать живые или инактивированные вакцины.

Профилактика заболевания

Основной профилактической мерой для предупреждения трихофитии является своевременная вакцинация животных качественными, малотоксичными препаратами, позволяющими выработать стойкий иммунитет к возбудителю заболевания. Не менее важно ограничить контакт собаки с незнакомыми, и тем более бездомными, животными во время прогулки. Кроме того, не следует забывать и о санитарно-гигиенических мероприятиях – подстилка собаки, миски, предметы ухода за животным и т.д. должны периодически обрабатываться дезинфицирующими растворами.

Дерматомикозы

Дерматомикозы – инфекционные зооантропонозные болезни с характерным поражением кожи и ее производных, вызываемые патогенными грибами-дерматофитами. Среди животных наибольшее распространение имеют:

трихофития (Trichophytia) – инфекционная болезнь животных и человека, характеризующаяся возникновением на коже резко ограниченных, шелушащихся участков с обломанными у основания волосами или развитием выраженного воспаления кожи, с выделением экссудата и образованием толстой корки, микроспория ((Microsporosis) – инфекционная болезнь, характеризующаяся поверхностным воспалением кожи и ее производных,

в редких случаях – парша (favus) – инфекционная болезнь, характеризующаяся образованием округлых пятен, покрытых толстыми серовато-жёлтого цвета корками — скутулами, постепенно приобретающими форму блюдца или щитка с приподнятыми краями.

Микроспорию и трихофитию объединяют под одним общим названием «стригущий лишай».

Грибы имеют нитчатое, неразветвлённое тело и образуют большое количество спор, что способствует их широкому распространению. Они обладают значительной устойчивостью к действию тепла и дезинфицирующих веществ, долго сохраняются во внешней среде: на подстилке, в почве, на деревянных предметах.
Эпизоотологические данные. Болезнь регистрируется повсеместно в любое время года. Трихофитией чаще болеют КРС, лошади, кошки, собаки. К микроспории восприимчивы лошади, кошки, собаки, пушные звери, лабораторные животные.

Носителями патогенных грибов являются мыши, крысы и другие грызуны.

Заражение происходит при контакте с больными животными, а также через предметы ухода, подстилку.

Особую опасность для человека представляют бездомные инфицированные собаки и кошки.

Болезнь чаще всего поражает молодых животных (до 1 года). Способствует распространению инфекции нарушение зоогигиенических правил содержания и кормления животных (скученность, нарушение нормального макроклимата и т.п.).

Источником инфекции является больное животное, передающие возбудителя при прямом или непрямом (через предметы ухода, подстилку, щетки, шлейки, ошейники и т.п.) контакте. Чаще всего заражение происходит через поврежденную кожу (ссадины, царапины и др. ).

Патогенез. Возбудитель, попадая на поверхность кожи, выделяет токсины и кератолитические ферменты, которые вызывают локальное поверхностное воспаление и разрыхление рогового слоя кожи. Затем возбудитель проникает в устья волосяных фолликул, в шейки волос, постепенно разрушая их структуру, что приводит к выпадению волос. При этом на поверхности кожи образуются многочисленные чешуйки и корочки высохшего гнойного экссудата.

Симптомы болезни:

Микроспория. Инкубационный период составляет от 22 до 47 дней. Отмечают поверхностную, глубокую (фолликулярную) и стертую (атипичную) форму болезни. У животных с высокой резистентностью отмечают поверхностную или атипичную форму болезни. У молодняка и ослабленных животных – фолликулярную. При отсутствии должного лечения поверхностная форма может переходить в глубокую с хроническим течением болезни.

Поверхностная форма характеризуется выпадением и (или) обламыванием пораженных волос с образованием на их месте локальных, резко ограниченных безволосых шелушащихся участков кожи.

Последние обычно сухие, без признаков экссудации (серозного или гнойного выпота на коже). Пораженные очаги могут быть одиночными или располагаться на различных участках тела животного.

При фолликулярной форме поражаются более глубокие слои кожи, на коже образуются корки засохшего экссудата, являющиеся благоприятной средой для развития секундарной микрофлоры.

Скрытая форма характеризуется наличием безволосых участков или пятен с редкими волосами. Пораженные волосы при осмотре не выявляются, их обнаруживают только люминесцентным методом. Выраженные местные воспаления отсутствуют. Такие участки кожи часто имеют вид потертостей или ссадин, что затрудняет постановку клинического диагноза.

Трихофития. Инкубационный период продолжается от 5 до 30 дней. Более характерна фолликулярная форма болезни. При этом на коже образуются резко ограниченные безволосые участки кожи. В местах поражения отмечаются воспалительные процессы с выделением экссудата, который, высыхая, превращается в толстые корки.

Вследствие глубоких поражений волосяных фолликул на коже животных после заживления остаются обычно безволосые или депигментированные пятна.

Фавус (парша) у собак и кошек наблюдается сравнительно редко и характеризуется поражением кожи, волос, когтей, иногда паренхиматозных органов. Участки поражения отмечают в основном на коже головы, ушных раковинах, лапах возле когтей и на других местах. Возбудитель фавуса нередко проникает в глубь дермы, подкожной клетчатки и в костную ткань. Иногда он обнаруживается даже в головном мозге животного. Характерным клиническим проявлением фавуса у животных является образование на коже струпьев, напоминающих чашечку с углублением в центре. При этом волосы в местах поражения паршой выпадают, но не обламываются, как при микроспории и трихофитии.

Продолжительность болезни составляет от 3-9 недель до 12 месяцев.

Диагноз устанавливают на основании клинико-эпизоотологических данных, результатов микроскопии патологического материала, выделения культуры грибов на питательных средах.

Для дифференциальной диагностики микроспории применяют метод люминесцентной диагностики с использованием лампы Вуда. При этом пораженные участки дают ярко-зеленое, изумрудное свечение в ультрафиолетовых лучах (черные волосы не всегда дают указанное свечение даже при сильном поражении).

Дерматофитозы дифференцируют от чесотки, экземы, дерматитов незаразной этиологии.

Лечение. Больных животных изолируют.

В качестве специфических средств лечения собак и кошек используют различные моно- и поливалентные вакцины (Вакдерм, Поливак-ТМ, Микродерм и др.) в лечебных дозах.

Шерсть в месте поражения и на 1-2 см вокруг него выстригают. Легко отделяемые корочки снимают, а пораженные участки кожи, захватывая частично здоровую, обрабатывают одним из следующих препаратов: спрей Зоомиколь, Клотримазол, Нитрофунгин, АСД — антисептик-стимулятор Дорогова, 3-ю фракцию (для наружного применения), суспензию гризеофульвина, 5-10%-ную салициловую мазь, йодоформ, мазь «Ям» (согласно наставлениям по их применению).

Используют препараты системного действия: гризеофульвин, низорал.

Для ускоренного восстановления волосяных фолликул и шерстного покрова животного рекомендуется ежедневный прием препаратов серы и поливитаминов с микроэлементами в течение всего курса лечения.

Профилактика. В качестве специфической профилактики используют вышеупомянутые вакцины ((Вакдерм, Поливак-ТМ, Микродерм и др.), которые вводят в профилактических дозах согласно наставлениям по их применению.

симптомы, лечение в домашних условиях, диагностика, передается ли человеку

Дерматические болезни, возбудителями которых служат патогенные низшие грибы, считаются одними из наиболее неприятных. Ими болеют многие виды животных и человек, для лечения требуется длительная и весьма специфичная терапия, при этом не всегда удается избежать рецидивов. Дерматомикозы характеризуются воспалительными процессами в коже и повреждением клеток корневой системы волос, в результате чего развивается гнездная алопеция (выпадение волос на отдельных участках). К таким патологиям относятся трихофития, микроспория и парша. У собак наиболее распространена трихофития, которой чаще подвержены молодые животные.

Что такое микроспория у собак

Итак, что такое микроспория у собак? Это заболевание, родственное трихофитии. Вызывается грибками из рода Microsporum. Чаще всего на собаках паразитирует вид Microsporum gypseum. Микроспория относится к группе заболеваний, называемых «дерматофитами» или микозами. Нередко микроспорию называют «стригущим лишаем», хотя все же правильнее использовать этот термин по отношению к трихофитии.

Проблема в том, что возбудители этих патологий крайне многочисленны и в окружающей среде встречаются повсеместно. Зачастую различия между отдельными видами настолько неочевидны, что точно различить их может разве что опытный микробиолог, да и то – исключительно в условиях хорошо оборудованной клиники. «На глаз» сделать это в любом случае нереально.

Особенно подвержены заражению следующие категории животных:

  • Страдающие заболеваниями гормональной природы.
  • Крайне высок риск заболеть у собак, которых неоправданно долго лечили мощными антибактериальными препаратами и противовоспалительными кортикостероидами.
  • Повышает риск болезни некачественное и несбалансированное питание.
  • Микроспория намного чаще поражает животных, организму которых не хватает витаминов А и Е (они во многом ответственны за состояние кожи).

Заболевание вызывается спорами гриба, попавшими на кожу при прямом контакте с больным животным или даже местом (а также предметами ухода), на котором сидел больной пес или кот.

Нужно отметить, что кошачья разновидность микроспории и трихофитии считается наиболее опасной, так как моментально передается от кошек к собакам и даже человеку. Жизненная стойкость грибных спор крайне высока: с высокой вероятностью они могут оставаться заразными даже через полтора года после «высева».

Пути заражения собаки

Домашний питомец может заразиться микроспорией несколькими путями, не обязательно контактируя с больными бродячими животными.

Окружающая среда


Питомец может заразиться стригущим лишаем во время прогулок. Источниками инфекции является почва или растительность. В грунте микроспоры грибка сохраняются до 2 месяцев.
Некоторые стойкие грибковые споры сохраняют активность во влажной почве до 10 лет.

Контакт с другими животными

Домашний питомец чаще всего заражается стригущим лишаем от бродячих собак или кошек.

Микроспоры сохраняются в шерсти до нескольких лет. В этот период животные являются источником заражения.

Повторное инфицирование

Микроспория образует огромное количество спор, которые активны в течение продолжительного периода. Если животное болело микроспорией, дезинфекции подвергают все вещи, с которыми питомец контактировал.


Подстилку, игрушки и кормушку промывают 2% раствором формальдегида и 1% гидроксида натрия. После полного выздоровления животного контроль ветеринара осуществляется еще в течение месяца, иначе вероятно повторное инфицирование.

Отличия микроспории от трихофитии

Как мы уже говорили, разница между патогенными дерматофитами довольно незначительна. А потому и отличия микроспории от трихофитии несущественны:

  • Во-первых, это возбудитель, т.е. Microsporum gypseum или иной паразит из рода Microsporum.
  • Во-вторых, возбудитель микроспории паразитирует на самом волосе, в то время как при трихофитии патогенный гриб находится внутри волосяного стержня.
  • В-третьих, микроспория намного чаще обнаруживается при помощи лампы Вуда.
  • В-четвертых, при этой болезни больное животное нередко страдает от зуда, чего при трихофитии почти не бывает.

В общем-то, на этом различия заканчиваются. Заболевания протекают практически идентично, лечение также очень схоже, обе патологии известны как «стригущий лишай».

Микроспория — стригущий лишай, возможные причины заражения

Вообще под понятием «лишай» понимают такие заболевания, как трихофития, парша, микроспория. Микроспорию вызывают многочисленные грибки рода Microsporum. Чаще собак поражают такие виды, как canis и gypseum. При микроскопическом исследовании можно обнаружить споры размером до 5 мкм. Они локализуются внутри волоса животного и около его основания. Это неактивные формы грибка. Живые грибы представляют собой нити мицелия, которые пронизывают собой шерстинки животного и поражают кожу.

Собака может заболеть микроспорией не зависимо от времени года. Особенно подвержены грибковой инфекции щенки и пожилые животные. Микроспоры проникают через кожу, активизируются и начинают выделять токсические вещества. В результате этого роговой слой кожи разрыхляется, возникает воспаление.

Микроспория часто поражает собак, у которых наблюдается следующие проблемы со здоровьем:

  • дефицит витаминов А и ;
  • нарушение обмена веществ;
  • гормональный дисбаланс.

Такие состояния организма ослабляют иммунную систему собаки, и она не в состоянии противостоять атаке грибковой микрофлоры.

Симптомы и первые признаки заболевания

Как мы уже упоминали, с выявлением заболевания могут возникнуть проблемы, так как симптомы и первые признаки патологии достаточно разнообразны, и в «типовом» виде проявляются далеко не всегда. Как правило, первые очаги поражений появляются на коже живота, лап, в области гениталий, а также на голове. Кроме того, возможно развитие очагов инфекции на пальцах лап и даже между ним (хотя это и не так характерно). По виду это – пятна продолговатой формы с неровными краями. Кожный покров на этих участках краснеет, грубеет, в некоторых случаях быстро становясь «чешуйчатым».

Шерстный покров также утрачивает здоровый блеск, волоски становятся жесткими и грубыми, впоследствии – ломкими. У больной собаки большая часть шерсти напоминает старую обувную щетку.

Так как при микроспории часто бывает зуд, больная собака все время энергично чешется.

Вследствие этого на коже быстро появляются участки расчесов, глубокие царапины и ссадины, причем все эти повреждения впоследствии обсеменяются патогенной и условно патогенной бактериальной микрофлорой.

Возможные формы заболевания

Отметим, что ветеринары выделяют несколько форм заболевания, от которых напрямую зависит симптоматика:

  • Поверхностная микроспория. Встречается чаще всего. Характеризуется быстрым развитием на коже участков облысевшей кожи, на которой, если присмотреться, видны «пеньки», оставшиеся от обломившихся волос. Если животное вовремя не начать лечить, почти всегда эта разновидность осложняется развитием гнойных воспалений (следствие обсеменения кожи гноеродной грибковой микрофлорой).
  • Наиболее тяжелая форма — глубокая. Диагностировать микроспорию в этом случае проще всего, так как болезнь в этом случае сопровождается появлением ярко выраженных клинических признаков. Проявляется это в образовании многочисленных корочек и корост, трещин, язвенных поражений кожи, причем они имеют склонность постепенно сливаться друг с другом. Состояние больного пса при этом столь же быстро ухудшается, очень вероятен сепсис. К счастью, встречается эта разновидность крайне редко, да и подвержены ее развитию исключительно животные с серьезными патологиями иммунной системы, при условии очень плохого питания. Здоровому и физически крепкому псу патогенные грибки не так страшны.

  • Иногда микроспория протекает по скрытому типу. Считается, что подвержены ей исключительно питомцы в возрасте от года до трех или четырех лет. Клинические признаки развиваются медленно, иногда болезнь затихает, наступает ремиссия. Если штамм гриба не особо патогенный, а иммунитет животного достаточно силен, возможно выздоровление. Проблема в том, что не менее 90% таких «выздоровевших» собак в течение многих месяцев могут оставаться носителями заболевания.
  • Различают также стертую форму заболевания. Зачастую в течение нескольких недель или даже месяцев кожа больного питомца имеет совершенно нормальный вид, и лишь только потом на ней появляются небольшие очаги поражений. Впоследствии эти пятна покрываются корочками и шелушатся. Других клинических признаков при этом зачастую нет.

Вне зависимости от конкретной формы болезни, при ее прогрессировании очень характерно развитие вторичных аллергических реакций. Необходимо учитывать этот нюанс при лечении, своевременно вводя антигистаминные лекарства.

Инкубационный период

Все начинается с попадания упомянутых выше спор на кожу питомца. Считается, что инкубационный период может занять от четырех до шести недель. Впрочем, некоторые штаммы (к примеру, все те же кошачьи разновидности) могут вызывать появление первых клинических симптомов уже через неделю.

Возможные осложнения

Если оставить заболевание без внимания, на его фоне могут развиться другие проблемы. Так, воспалительный процесс ослабляет иммунитет животного и повышает риск вторичных инфекций. Травмы и расчесы также открывают путь заражению.

Кроме того возможны колебания гормонального фона, которые также могут стать причиной многих проблем.

Анализы и методы диагностики

Как мы уже косвенно упоминали, выявление грибковых патологий – задача не слишком простая, а потому анализы и методы диагностики очень важны. Заметим, что визуальное обследование животного не может являться основанием для постановки диагноза ни при каких обстоятельствах. Дело в том, что симптомы микроспории специфическими не являются. Круглые пятна, корочки и коросты – все это с таким же успехом может быть признаком иных патологий, не имеющих ничего общего с патогенными грибами.

Лампа Вуда

Так называется особый светильник, источником света в котором является УФ-лампа. Сама диагностика проста – подозреваемое в заражении животное, находящееся в затемненном помещении, «просвечивают» этой лампой.

Суть метода в том, что около 50% патогенных штаммов грибов начинают светиться под ультрафиолетом. Способ не слишком надежный, используется лишь в качестве предварительной экспресс-диагностики.

Микроскопическое исследование

В этом случае под микроскопом исследуют проб волос и соскобы кожи, которые берут с границы здоровых и пораженных тканей. Методика довольно надежна, но лишь в том случае, когда исследование проводит опытный ветеринар-микробиолог. Неопытный специалист может и не заметить тонкие нити мицелия и споры. Кроме того, нужно достаточно качественное оборудование.

Выращивание культуры возбудителя на питательной среде

Самый надежный, но в то же время самый дорогой и долгий способ диагностики. Проблема в том, что на питательных средах возбудитель микроспории растет долго, порой этот процесс может отнять целый месяц.

Чем лечить лишай в домашних условиях?

Первый метод

Что потребуется:

  • одноразовые медицинские перчатки;
  • хозяйственное мыло;
  • ватные диски;
  • йод.

Как обрабатывать:

  • наденьте перчатки и аккуратно подстригите шерсть в местах, пораженных лишаем;
  • из хозяйственного мыла и теплой воды сделайте насыщенный мыльный раствор;
  • обработайте больные места при помощи ватных дисков, стараясь не причинить боль собаке;
  • после этого обработайте места поражения йодом.

Процедуру повторяют ежедневно, пока животное не поправится. Чтобы собака не зализывала ранки, воспользуйтесь Елизаветинским воротником.

Второй метод

Что потребуется:

  • одноразовые медицинские перчатки;
  • ватные диски;
  • яблочный уксус.

Как обрабатывать:

  • наденьте одноразовые перчатки и выстригите шерсть вокруг ранок;
  • смочите ватный диск в яблочном уксусе и обработайте пораженные места;
  • повторяйте обработку ежедневно, пока лишай не пройдет.

Этот метод подходит только для розового лишая. Другие виды патологии таким образом не лечатся.

Терапия различается в зависимости от вида патологии. В ветеринарных аптеках есть множество таблеток и лекарств, которые помогут вылечить заболевание быстро. Народными средствами проблему тоже можно решить. Пораженные участки следует смазать йодом. Затем нанести антимикотический препарат, наложить повязку. Для устранения лишая используют «Тербинафин», «Креолин». Важно своевременно обратиться к врачу и согласовать лечение с ним.

Стригущий лишай считается наиболее распространенным и опасным типом заболевания. Если нет возможности сразу посетить ветеринара, следует область вокруг пораженных мест осторожно выстричь, промыть, нанести антисептик. Затем стоит использовать противогрибковую мазь («ЯМ БК», «Клотримазол», «Миконазол»).

Избавиться от мокнущего лишая крайне сложно. Если делать даже малейшие ошибки в лечении, экзема снова распространяется по телу. Поэтому терапия должна быть комплексной, под строгим контролем врача. Сначала следует выявить аллерген, вызвавший экзему у собаки. Метод лечения выбирают исходя из причины:

  • Паразиты, плохая гигиена. Питомца нужно хорошо помыть, удалить блох и в дальнейшем содержать в чистоте.
  • Питание. Внести коррективы в меню, убрать жирную и крахмалистую еду. Потребуется некоторое время соблюдать лечебную диету, употреблять витаминно-минеральные комплексы для питомцев.

Вместе с определением причины и устранением аллергена следует использовать наружные препараты. Это дегтярная, цинковая, ихтиоловая мазь.

Также эффективна мазь «ЯМ БК». Это нетоксичное, натуральное комбинированное средство, обладающее противогрибковым действием. Его следует наносить дважды в сутки. Продолжительность курса – 7-10 дней. Обычно после завершения лечения наблюдается восстановление кожного покрова, начинает активно расти шерсть. Мазь разрешается комбинировать с другими лекарствами. Побочные эффекты от использования отсутствуют.

В составе цинковой мази 10% находится вазелин и оксид цинка. Последний компонент оказывает подсушивающий и антисептический эффект. Если мазать средство на пораженный участок, образуется барьер, защищающий от раздражителей. Это благоприятно влияет на скорость заживления. Мазь наносится дважды в день до полного восстановления кожи (1-1,5 недели). Препарат нетоксичен. Если не превышать дозировку, побочных реакций не будет.

Ихтиоловая мазь 10,20%. Основное действующее вещество – ихтиол. Он имеет противогрибковый, противовоспалительный и антибактериальный эффект. Препарат используют дважды в день 1-1,5 недели. Это безопасное и натуральное лекарство. Наблюдается хорошая переносимость у собак. Отличается широким спектром действия – избавляет от чрезмерной активности сальных желез, снижает раздражение и шелушение кожного покрова.

Розовый

Лечение направлено на избавление от зуда и других неприятных симптомов. Чем чаще питомец чешется и раздирает кожный покров, тем больше внутрь попадает патогенной микрофлоры. Сначала собаке выписывают антигистаминные средства. Эффективно будет крушинное, абрикосовое или розовое масло. Можно использовать отвар лакрицы. С этим заболеванием иногда справляются только с помощью народных методов.

Главная задача терапии – это предотвращение стафилококка, стрептококка и экземы. Если инфекция появилась, значит, придется лечиться антибиотиками.

На состояние кожных покровов благоприятно повлияет цинковая мазь. Воспаление снимут противовоспалительные кортикостероиды. Раствор салициловой кислоты отличается антибактериальным и заживляющим эффектом. Вылечить заболевание поможет светильник с ультрафиолетовым облучением. Гигиене следует уделять особое внимание. Водные процедуры должны быть частыми, шампуни нужно выбирать антибактериальные и заживляющие.

Розовый лишай требует соблюдения особой диеты с полным исключением продуктов, вызывающих аллергию. Основные рекомендации по лечению:

  1. В первые пять недель терапии следует применять исключительно согласованные с врачом средства для мытья.
  2. Если на коже заметна сухость, стоит снизить частоту водных процедур.
  3. Не нужно выводить собаку на улицу в солнечную погоду.
  4. Можно приобрести смягчающий крем для кожи после консультации со специалистом.
  5. Комнату питомца важно тщательно проветривать, соблюдать комфортный температурный режим.

Среди народных средств выделяют следующие:

  • Масло облепихи. Три раза в день обрабатывать пораженные области. Делать это необходимо ежедневно.
  • Яблочный уксус. Мазать семь раз в сутки.
  • Настойка чистотела. Для приготовления следует подготовить темную стеклянную емкость, наполнить измельченными листьями и стеблями растения. Влить разбавленный спирт или водку, подождать три недели. Затем давать питомцу с едой под десять капель в сутки. Можно просто наносить на воспаления дважды в день.
  • Отвар гречки. На 2 ст. л. крупы взять 1 л воды. Варить на среднем огне час.

Отрубевидный

Диагностика этого типа лишая затруднительна. Следует исключить пищевую аллергию, дерматиты, бактериальные инфекции. Потребуются анализы крови, кала, мочи. Проба эпидермиса считается тоже эффективным способом. Ее берут с границы здорового и пораженного участка.

Для лечения подходит крем «Ламизил» или его аналог «Лотримин». Наружно выписывают средства, основанные на миконазоле, такие как «Ментакс», «Нафтин», «Спектазол», «Лопрокс». Купать питомца можно с помощью препаратов с кетоконазолом, сульфидом селена. Процедуру проводят 21 день, трижды в неделю.

Лечение не должно быть меньше месяца, завершается оно только с согласия врача. Патология нередко дает рецидивы, поэтому если закончить лечение слишком рано, инфекция появится снова.

Опоясывающий

Терапия при этом типе лишая не направлена на полное исцеление. Вирус в организме не исчезнет. Лечение носит симптоматический характер. То есть его цель – поддержание нормального качества жизни, быстрое устранение признаков патологии.

  1. Мытье собаки средствами с антисептическим воздействием. Это купирует воспаление, уменьшает опасность осложнений состояния по причине вмешательства патогенных бактерий.
  2. Применение аппликации с Линиментом бальзамическим. Он устраняет воспаление, остатки экссудата.
  3. Поливитаминные средства. Улучшают состояние организма.

При водных процедурах можно использовать следующие народные способы:

  • Отвар ромашки, коры дуба, череды, чабреца. Растения обладают антисептическим воздействием, подсушивают поврежденные участки.
  • Хозяйственное и дегтярное мыло.

Остановимся подробнее на тех средствах, которые помогают справиться с лишаём.

Список мазей против лишая у животных:

  • Серная мазь.
  • Ихтиоловая мазь.
  • Цинковая мазь.
  • Ямб.
  • Имаверол.
  • Фунгин.
  • Санодерм.
  • Клотримазол.
  • Миконазол.
  • Лекадерм.

Эти средства имеют схожие компоненты, но составы отличаются. Чтобы выбрать самое подходящее для конкретного случая, придётся обратиться к ветеринару.

Нельзя лечиться по интернету. Для установления вида лишая придётся сдать анализы. Постарайтесь попасть в ветеринарную лечебницу.

Если запустить лишай, животное может погибнуть, ведь он поражает тело, проникает в кровь через раны от расчёсов.

Не у всех есть возможность попасть к ветеринару на приём, 30% населения России проживают в сёлах, которые расположены за сотни километров от города.

Нельзя оставлять животное наедине с мучительной болезнью. Постарайтесь самостоятельно определить вид лишая, купите мазь в ветеринарной аптеке.

Из препаратов для животных популярностью пользуется мазь Ямб. Она предназначена для лечения лишая.

Серную мазь продают и в обычных аптеках. Часто мажут заразившихся детей ветеринарными препаратами, поскольку они являются действенными.

Важно! Не ждите быстрого результата. Лишай скинет несколько слоёв, прежде чем сойдёт.

Постарайтесь аккуратно обрезать шерсть вокруг проплешины, чтобы захватить мазью места вокруг лишая. Это остановит его разрастание.

Дезинфицируйте помещение и все предметы, к которым прикасалось животное. Изолируйте его на время в отдельную комнату. Читайте инструкцию к препарату.

Лечение микроспории у собак: методика и лекарственные средства

Сегодня существует немало эффективных и качественных препаратов, при помощи которых ветеринары справляются с патогенными грибками. Кроме того, за прошедшие годы специалистами было разработано несколько типовых схем лечения.

Хотелось бы отметить, что в большинстве случаев ветеринары не приветствуют лечение микроспории на дому, так как часто это приводит к заражению лишаем всех живущих в доме людей и животных.

Примерная схема лечения лишая

Отметим, что приведенная нами ниже схема лечения является именно примерной, и ее необходимо корректировать, исходя из реалий того или иного случая:

  • Перед лечением животное всегда подготавливают. Шерсть вокруг очагов поражения состригают и даже выбривают. Если пес невелик, очень желательно выстричь его полностью. Это сильно облегчит проведение лечебных процедур и сделает их более эффективными.
  • Если болезнь протекает в поверхностной или стертой форме, и при этом очаги поражения кожи маленькие и малочисленные, допускается использование только местного лечения. Хорошо себя зарекомендовала салициловая мазь, мазь Ям, а также обычная спиртовая настойка йода. Отметим, что перед нанесением мазей целесообразно обрабатывать участки кожи водой с добавлением пары капель все того же йода.

  • Чтобы удалить с поверхности кожи коросты и чешуйки, раз в три дня целесообразно мыть больного питомца шампунями с кератолитическим эффектом. В то же время можно использовать шампуни с противогрибковым действием, причем для этого неплохо подходит обычный Низорал.
  • В первую неделю собаку обязательно нужно купать в растворах противогрибковых препаратов.
  • Прочие мероприятия зависят от состояния конкретного животного. Так, рекомендуется назначение иммуностимуляторов и противомикробных препаратов в случаях, когда к грибковой инфекции добавляется патогенная грибковая микрофлора и т.д.
  • Обязательно качественное и сбалансированное питание. Рекомендуем проконсультироваться с ветеринаром и выбрать подходящий ветеринарный корм-холистик.

Основные медикаментозные препараты для лечения микроспории

Непосредственно для уничтожения патогенных грибков могут быть использованы следующие препараты:

  • Ивамерол. Это очень действенное (но недешевое) лекарство, выпускаемое в виде раствора. Его разбавляют в кипяченой воде в соотношении 20 мл лекарства на литр воды, после чего используют для купания больной собаки. Если пес мелкий, его необходимо усаживать в раствор по шею и выдерживать в нем не менее пяти минут.

  • Ирунин и все прочие производные интраконазола (Клотримазол, Миконазол). Обычно их применяют в дозе по 10 мг на каждый килограмм живого веса собаки. Дают эти препараты в течение десяти дней. Средство мощное и зачастую позволяет вылечить легкие случаи без использования иных препаратов, но при излишне длительной его подаче у собаки могут начаться проблемы с печенью и почками.
  • Хорошо помогают антибиотики из группы гризеофульвинов. Их назначают в дозе по 18 мг на каждый килограмм живого веса.

В качестве средств вспомогательной терапии часто назначают Гамавит (стимулирует специфическую резистентность), а также поливитаминные комплексы. Для профилактики бактериальных поражений кожи назначают антибиотики широкого спектра действия из группы цефалоспоринов.

Народные средства при лечении микроспории

Использовать народные средства можно лишь в тех случаях, когда болезнь протекает в самых легких формах, поражения кожи немногочисленны, а их общая площадь невелика. В прочих случаях тратить время на «самолечение» не нужно.

В домашних условиях можно использовать следующее:

  • Деготь березовый. Наносится в чистом виде на пораженные участки кожи не чаще двух раз в день на протяжении недели. При развитии видимого воспаления, отечности, зуде и признаках аллергии лечение немедленно прекратить.
  • Смесь дегтярного и хозяйственного мыла в виде кашицы. Эту смесь также используют в виде аппликаций на пострадавшие участки кожи. Накладывают их трижды в день, время экспозиции – от 15 до 20 минут, после процедуры смесь смывают прохладной водой. При передерживании возможен химический ожог кожи.
  • Больного питомца также советуется купать в настоях ромашки, календулы и дубовой коры (1:1:1). Это поможет предотвратить развитие сильных воспалительных реакций на коже.

Лечение мокнущего лишая

Заболевание лечится долго. Залог успеха — содержание собаки в чистоте, подкрепленное уничтожением грибков. Заболевших животных отделяют от остальных, обеспечивают комфортное содержание с ежедневной влажной уборкой и обработкой фунгицидными средствами. Для удовлетворения потребности собаки в компонентах питания используют готовые корма премиум-класса или натуральные, аналогичные по качеству.

Наружные средства

Собак обрабатывают жидкостями либо мазями. Среди водорастворимых препаратов востребованы следующие:

  1. Имаверол. Концентрат эмульсии разбавляют подогретой водой 1:50. Курс лечения проводят четырьмя обработками с трехдневным интервалом. Первая заключается в орошении из пульверизатора всего туловища (против шерсти). Расход на собаку зависит от ее величины и составляет 0,1–0,5 л. В последующем лекарство наносят на пораженные участки.
  2. Фунгином пропитывают ватные диски, аккуратно обрабатывают воспаленные части кожи, захватывая прилегающие ткани. Процедуру повторяют в течение 10–14 суток.
  3. Ежедневно втирают в пораженные места салициловый спирт или однохлористый йод.

При умеренном воспалении кожи используют мази, гели, линименты:

  1. Ям — размягчает корочки, обладает антисептическими свойствами. Об успехе лечения свидетельствует начинающая отрастать шерсть.
  2. Клотримазол. За сутки обрабатывают 3 раза, курс лечения 10–14 дней.
  3. Экзодерил. Мазь наносят однократно 2–4 недели подряд.
  4. Микозон. Применяют дважды в день. Курс 14–45 суток.

При масштабных поражениях кожи для лечения собак применяют оральные антимикотики:

  • Гризеофульвин;
  • Флуконазол;
  • Кетоконазол.

Препараты обладают побочными эффектами, противопоказаниями, поэтому лечение проходит под контролем ветеринарного врача.

Лечебные вакцины

Разработанные в России биопрепараты — Вакдерм, Поливак-ТМ, Микродерм — стимулируют выработку антител против микроспории, а также трихофитии. Первые несколько суток заболевание обостряется, но затем наступает заметное улучшение. Изначально вакцины разрабатывались для превентивной иммунизации. Однако из-за осложнений их применение ограничено.

Успех лечения зависит от точности выполнения лечебной схемы, назначенной врачом. Заниматься самолечением, смазывая поврежденную поверхность сомнительными мазями, чревато усугублением ситуации. Лечение подразумевает использование четырех действенных мероприятий:

  • Постановка уколов – если наблюдается гнойное воспаление, иммунитет понижен.
  • Дача таблеток – антигистаминного свойства, для купирования симптомов аллергии.
  • Наложение мазей – противовоспалительного, обезболивающего эффекта.
  • Периодическое промывание собаки шампунями успокаивающего действия.

Мазать нужно стерильными предметами, максимально обезопасив соприкасающиеся поверхности (надеть перчатки). Наиболее обширные очаги следует обрабатывать несколько раз в течение дня.

Ежедневно повторяют лечебные действия. Круг применений средств борьбы достаточно широк, ветеринар подберет действенный способ устранения грибка.

Достаточно эффективно зарекомендовали себя следующие медицинские препараты:

  • Итраконазол. Мощное средство, оказывает воздействие напрямую на структуру грибка, разрушает клеточные стенки паразита. Имеет относительно небольшое количество побочных эффектов. Самое яркое проявление побочки: тошнота, рвота, пропадание аппетита.
  • Антибиотики группы гризеофульвины, немногочисленные лекарственные средства, оказывающие разрушительное воздействие на грибы. Антибиотики сильно воздействуют на тонкую слизистую оболочку желудка, имеют множество побочных явлений. Запрещается использовать таблетки между кормлением, лучше давать непосредственно после еды. Особые противопоказания: нельзя давать беременным животным, при почечной недостаточности. Случаи передозировки: лихорадка, понос, анемия, кома.
  • Серные мази. Оказывают лечащий эффект при длительном использовании. Лучше сочетаются с шампунями. Важно полностью состричь шерсть, либо частично сбрить шерстный покров.
  • Вакцина. Средство неплохо доказало полезность. Может применяться в целях профилактики, в составе комплексного лечения.

Опасен контакт собаки и ребенка, человека, перенесшего недавно инфекционную болезнь. Ежедневно проводите тщательную обработку поверхностей, особенно имеющих контакт с зараженной кожей питомца.

Ковры, мягкую мебель можно обрабатывать паром. Твердые предметы, вещи дезинфицирующими средствами, содержащими хлор.

Некоторые специалисты считают, что пораженные участки нужно смазывать уксусом (яблочным) примерно 6 раз в день. Также больное животное нельзя купать, но с ним нужно долго гулять на солнце.

Иногда ветеринарные доктора рекомендуют антигистаминными мазями и кремами смазывать пораженные места, дабы снять зуд.

Что может порадовать хозяина животного, у которого появилось такое заболевание, так это то, что болезнь незаразна.

Лечить лишай можно в домашних условиях, но перед этим следует посетить ветеринара и сдать необходимые анализы. Лечение заболевания можно начинать после получения результатов диагностики, когда врач сможет назначить необходимые препараты.

Если у вас есть другие домашние животные, которые могут заразиться, их надо изолировать.

ПОДРОБНЕЕ ПРО: Аллергия на собаку у ребенка: симптомы и лечение

Главное условие и залог успеха в лечении лишая — комплексный подход.

Хорошо зарекомендовал себя пероральный препарат Гризеофульвин, который можно добавлять в пищу. Но у него есть существенный побочный эффект: он оказывает токсическое действие на костный мозг, угнетая функцию кроветворения.

Перорально возможно применение интраконозола или кетоконазола, хотя его эффект при монотерапии не доказан.

Лечение кожных заболеваний также возможно с помощью ветеринарных препаратов Нобивак, Поливак, Вакдерм. В лечебной дозе они вводятся однократно внутримышечно. Существует профилактическая доза, введение которой необходимо повторять с периодичностью один раз в 6 месяцев.

Собака при этом может испытывать дискомфорт, т.к. нередко ощущает жжение в месте нанесения лекарства. Для этих целей применяется нитрофунгин, фукорцин, клотримазоловая или другая мазь, обладающая антимикотической активностью.

Все процедуры проводятся в резиновых перчатках, для предупреждения возможного заражения.

Для стимуляции улучшения работы иммунной системы собака должна получать иммуностимулирующие препараты (Циклоферон,Иммунофан) и поливитаминные комплексы и витамины для ускорения роста новой здоровой шерсти ( Бреверсы, Тривитамин).

Наблюдайте за своими домашними любимцами и при малейшем ухудшении их состояния обращайтесь к ветеринару. Если начать лечить животное вовремя, то потом не прийдётся сожалеть о безвозвратно упущенных возможностях!

Лишай у собак

Как вы уже поняли из первого блока нашей статьи, прежде чем начинать лечение лишая у собаки в домашних условиях нужно поступательно сделать 2 вещи: обратиться к специалисту и поставить точный диагноз.

Тем не менее, бывают случаи, когда обратиться к врачу нет возможности, тогда (и только тогда) наши действия следующие: мы убеждаемся в том, что симптомы лишая у собаки полностью соответствуют одному из тех видов, что описали мы, в том числе совпадают примеры на фото — тогда на свой страх и риск можно начать лечение.

Общие рекомендации по лечению лишая у собак следующие:

  • Определяем причину заражения и в первую очередь боремся с ней;
  • Попутно облегчаем симптомы лишая у собаки при помощи мазей, указанных в списках выше.

Профилактика

Микроспория или стригущий лишай – одно из самых распространенных заболеваний кожи. Оно относится к группе дерматомикозов, то есть вызывается дерматомицетами — несовершенными грибами.

В эту же группу болезней также входит парша и трихофития. Все эти заболевания заразны и для человека, причем их возбудители во внешней среде сохраняются довольно долгое время и очень устойчивы к дезинфицирующим средствам.

Как и все грибки, возбудители микроспории размножаются спорами. Заражение происходит через шерсть и чешуйки эпителия, на которых споры во внешней среде способны сохраняться до полутора лет. Поэтому животное может заразиться не только при непосредственном контакте, но и при использовании предметов ухода за собакой, пораженной микроспорией.

Уход за больной собакой

Учитывая, что микроспория опасна и для человека, уход за больной собакой должен предусматривать сразу две цели: владельцу нужно и помочь своему питомцу, и самому не заболеть.

А потому все операции при уходе и лечении нужно выполнять, предварительно надев одноразовые медицинские перчатки!

Ухаживать за псом нужно следующим образом:

  • Животное нужно регулярно вычесывать. Все собранные волоски собирают в плотный пластиковый пакет. Расческу после обработки нужно кипятить в течение минимум получаса (так что использовать лучше металлический гребень).
  • Обязательно качественное и сбалансированное питание. Выше мы уже указывали, что идеальным выходом будет использование специальных ветеринарных кормов, но не хуже подойдет качественная «натуралка». Предпочтительнее использовать курицу, кролика, небольшие количества нежирной морской рыбы (в отварном виде).

Причины

Собака заражается при контакте с больной особью или местом, где она лежала. Грибок уютно чувствует себя в чешуйках отслоившегося эпидермиса, а также обломках шерстинок. В них он сохраняет жизнеспособность во внешних условиях до 1,5 года, а в помещениях — до 9. Собака может месяцами носить на себе микромицет и не заболеть.

Микромицеты поникают внутрь кожи, разрыхляют роговой слой, размножаются в дермальных клетках, вызывая воспаление. Лишенные питания шерстинки становятся тонкими, обламываются и выглядят подстриженными. Отсюда название «стригущий лишай». Заболевает преимущественно животные моложе года, а также пожилые собаки.

Прививка и вакцины

К счастью, микроспория относится к числу тех болезней, для которых разработана и активно используется специфическая профилактика. Более того, вакцины от микроспории отчасти уникальны, так как используют их не только с целью профилактики, но также для лечения больных собак.

Прививка и вакцины против этой патологии используются в нашей стране уже давно, и лучше всего себя зарекомендовали следующие средства:

  • Вакдерм. Вводится в дозе по 0,5 мл на собаку с ревакцинацией через две недели. Если вес животного более 5 кг, препарат вводится в дозе по 1 мл. То же касается случаев, когда в конкретной местности напряженная ситуация с дерматомикозами.
  • Поливак-ТМ. Вводится (в зависимости от веса собаки и цели) в дозе от 0,3 до 0,6 мл, однократно. Если препарат применяют с лечебными целями, то через две недели нужно делать ревакцинацию.

Вакцина для собаки от лишая

Существует прививка от лишая. Она защитит животное от возникновения болезни на год, после чего придётся сделать повторную прививку.

Существует несколько аналогичных препаратов, один из них — Вакцина Вакдерм.

Вакцину вводят здоровому животному. Если пёс уже болен, она ускорит проявление первых признаков болезни. Обычный курс вакцинации составляет 2 укола.

Если животное уже было заражено, прививку повторяют 4 раза. Обязательно проконсультируйтесь с ветеринарным врачом перед применением.

Профилактика микроспории

Чтобы профилактика микроспории была действенной и эффективной, необходимо строго соблюдать следующие правила:

  • Не реже раза в квартал показывать питомца ветеринару.
  • При появлении любых странностей, касающихся кожного покрова животного (внезапное появление залысин, покраснений и т.д.), тоже необходимо сразу же проконсультироваться со специалистом.

  • Не допускать контактов собаки с бродячими и дикими животными.
  • Если местность, где проживает собака, неблагополучна по случаям дерматомикозов, не реже раза в квартал питомца нужно прививать. Это существенно снизит вероятность заболевания.
  • В тех же случаях собаку примерно раз в месяц купают, используя шампуни с противогрибковым эффектом (к примеру, все тот же Низорал). Главное – не увлекаться, так как в противном случае будет уничтожена и полезная микрофлора кожи питомца.

Передается ли к человеку

Розовый и мокнущий лишай не представляет никакой опасности для человека и других домашних питомцев. Об этом мы уже упоминали в нашей статье.

Стригущий, опоясывающий и отрубевидный лишай – это заразное заболевание. Он не опасен только абсолютно здоровым людям с сильным иммунитетом. Если иммунная система человека самостоятельно справится с заболеванием, можно заразиться и не заметить этого.

Но, для маленьких детей, людей с подорванным иммунитетом, беременных и кормящих женщин лишай представляет огромную опасность. Поэтому нужно соблюдать меры предосторожности при общении с животными.

Опасность заражения представляют не только бездомные уличные собаки и заболевшие животные. От домашних питомцев тоже можно заразиться, если они являются носителями спор грибка.

Лишай очень заразен. Из четырёх видов для человека опасен стригущий и отрубевидный лишай.

Если животное заболело, к нему нельзя прикасаться, необходимо изолировать его на время лечения по возможности.

Чаще мойте полы со специальным дезинфицирующим средством. Хорошо помогает хлор.

Лечение лишая у человека занимает несколько недель. Первые улучшения станут заметны к концу первой недели лечения.

На время лечения исключаются водные процедуры, грибок разносится по телу водой. В запущенных ситуациях применяют инъекции.

Полезное видео

    Похожие записи
  • Укусила собака что делать и куда обращаться?
  • Как проявляется чумка у собак: симптомы и признаки, когда делать прививку и как лечить в домашних условиях
  • Почему у собаки пахнет изо рта тухлятиной?
  • Почему собака не ест сухой корм и не пьет воду?
  • Прививки собакам по возрасту: таблица с ценами

Трихофития собак | ГБУ РО Рязанская областная ветеринарная лаборатория г.

Рязань

5 февраля 2018 года в отдел физико-химических и радиологических исследований ГБУ РО «Рязанская областная ветеринарная лаборатория» был доставлен патологический материал от собаки (шерсть), для проведения исследования на дерматофиты.

 

При микологическом исследовании, отделом физико-химических и радиологических исследований в патологическом материале от собаки обнаружены споры грибов рода Trichophyton. Диагноз трихофития установлен.
 
Трихофития (стригущий лишай) – это кожное инфекционное заболевание, развитие которой вызывают споры патогенных грибков. Заболевание опасно не только для питомцев, но и для их владельцев.
 
Возбудителями трихофитии являются грибки, которые относятся к роду Trichophyton. Их споры могут быть где угодно: на подстилке, в почве, на коже зараженного животного, в навозе и т.д. Они попадают на кожу питомца и начинают размножаться, приводя к развитию трихофитии.
 
К благоприятным факторам разбития заболевания относят:

  • наличие на коже царапин и ранок;
  • ослабленный иммунитет;
  • отсутствие полноценного питания;
  • наличие паразитарных заболеваний;
  • наличие кожных болезней.

 
Организм таких собак не может сопротивляться развитию грибка, так как находится в сильно ослабленном состоянии. Именно их заболевание поражает в первую очередь.
 
Симптомы трихофитии у собак
 
Стоит отметить, что во время инкубационного периода хозяева даже не догадываются о наличии у питомца заболевания, так как яркие признаки в этот момент отсутствуют. Но уже спустя приблизительно две недели симптоматика проявляется очень чётко.
 
Возбудитель начинает размножаться в эпидермисе и шерсти собаки. Грибки разрушают волосяные луковицы и выделяют токсичные вещества, которые приводят к воспалению и разрыхлению верхних слоев кожи. На коже питомца появляются небольшие залысины округлой формы (в первую очередь – на голове, ушах, морде, лапах), постепенно они сливаются и поражают более обширные участки кожи. Кожа на пораженных участках краснеет и немного опухает. Залысины покрываются корочкой серого оттенка, под которыми может скапливаться гной. Кожа под коростами влажная, воспаленная, шерсть как будто подстрижена (отсюда и произошло название болезни). Собака испытывает сильный зуд, постоянно чешется и беспокоится. При отсутствии лечения развивается пиодерма.
 
Лечение назначает ветеринарный врач. При появлении первых симптомов заболевания, следует отвести животное в ветеринарную клинику.
 
Меры профилактики:

 

Элементарные правила способствуют если не полной защите животного от заболевания, то значительному снижению рисков инфицирования:

  • необходимо проводить в доме, где живёт питомец, ежедневную влажную уборку. При этом использовать дезинфицирующие средства;
  • мыть лапы животного после каждой прогулки и купать его по мере необходимости;
  • помнить, что заболевание передаётся контактным путём, и избегать бродячих собак;
  • своевременно избавлять питомца от паразитов;
  • собака должна жить в соответствующих гигиенических условиях;
  • обеспечить правильное и полноценное питание домашнему любимцу.

 
Отдельное внимание стоит уделить специальной противоинфекционной вакцине. Она может использоваться как для лечения заболевания, так и в качестве профилактического средства.

Стригущий лишай у собаки: признаки, опасность и терапия

Стригущий лишай у собаки или трихофития — довольно опасное заболевание, после которого у животного могут оставаться пятна, лишенные окраски, и участки кожи без шерсти. Как определить, что ваше животное поражено? Осмотрите его внимательно. На пораженных участках кожи сначала появляется сыпь, потом корка, а затем отваливается шерсть. Полысевшие места — очаги алопеции — всегда имеют круглую форму. Они могут болеть и чесаться. Хорошо рассмотрите пораженные места, поможет идентифицировать стригущий лишай фото. У собак видимых признаков может быть недостаточно, чтобы диагностировать заболевание. Все это может быть следствием других кожных недугов. Точный диагноз может поставить только ветеринар после проведения необходимых анализов. Если вы предполагаете, что стригущий лишай у собаки есть, не откладывайте визит в ветеринарную клинику.

Заболевание легко передается от одного животного к другому, поэтому владельцам нескольких собак необходимо сразу отделить больное животное от здоровых, а за остальными внимательно приглядывать, чтобы начать лечение при первых признаках. Стригущий лишай у собаки передается не только при контакте с заболевшим животным, но и через предметы ухода. Вероятность, что заболеют все собаки в доме, очень велика.

Еще одна неприятная сторона стригущего лишая связана с тем, что человеку он тоже передается. К группе риска относятся люди со слабым иммунитетом. От собаки может заразиться и хозяин, поэтому ограничьте общение своих детей с больной собакой и серьезнее относитесь к соблюдению правил гигиены. Пусть лучше они поиграют потом со здоровым животным, чем сами будут страдать от стригущего лишая. Если заражение все же произошло, немедленно обращайтесь к дерматологу. Чаще всего бывают поражены участки кожи, покрытые волосами. Диаметр очагов заболевания может доходить до 1,5 см. Волосы в этих местах обламываются на высоте 2-3 мм. Когда поражен участок голой кожи, он становится похожим на бледно-желтое пятно, имеющее шелушащийся центр.

Если врач диагностировал стригущий лишай, лечение у собак включает в себя следующие меры: антисептическую обработку пораженных участков, применение противогрибковых препаратов, введение вакцины, не только профилактической, но и лечебной, а также назначение медикаментов, активирующих иммунную систему. Специальной диеты не назначают, собака может продолжать питаться привычным кормом, стоит только добавить витамины, способствующие быстрому восстановлению шерсти. Если пораженные участки начали зарастать, скорее всего, болезнь побеждена. Точное заключение можно сделать по результатам повторной лабораторной диагностики.

Как можно предотвратить стригущий лишай у собаки? Своевременным введением профилактической вакцины. Процедуру проведут в любой ветеринарной лечебнице. Чаще проводите визуальный осмотр своего животного на предмет появления очагов поражения, чтобы при первых признаках отвезти его к ветеринару. Но лучше провести профилактическое вакцинирование, чтобы не беспокоиться о здоровье любимца.

Стригущий лишай (трихофития) у собак

ОГЛАВЛЕНИЕ

Введение……………………………………………………………………………3

Глава 1. Стригущий лишай (трихофития) у собак………………………………5

  1.  Определение болезни. Эпизоотические данные. Характеристика возбудителей трихофитии у собак………………………………………….…….5
    1.  Патогенез. Клинические признаки трихофитии у собак…………………..9

Глава 2. Диагностика. Лечение. Профилактика и меры борьбы трихофитии у собак………………………………………………………………………………………………………11

Глава 3. История болезни щенка с диагнозом трихофития……………………18

Заключение……………………………………………………………………….32

Список литературы………………………………………………………………34

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность работы. Перед отечественной ветеринарией и микологией остро стоит вопрос о совершенствовании существующих и разработке новых методов диагностики дерматомикозов, а также индикации возбудителей микозов в объектах внешней среды. Изменение экологического фона в ряде республик и областей, процессы урбанизации и связанные с ними изменения структуры и границ нозоареалов этих заболеваний, вносят серьезные изменения в эпидемиологию и влияют на характер клинического течения современных зоонозных дерматомикозов у животных и их владельцев. Это способствует распространению зоонозных дерматомикозов в различающихся по климатогеографическим, экономическим и экологическим условиям ареалах страны [15].

Изучению проблем трихофитии, обусловленной зоофильнымн трихофитонами, посвящены исследования Н.А. Медведевой (1968), П.Н. Пестерева (1988), Э.В Чистяковой (1992).  В них освещены особенности морфологии грнбов-возбудителей, вопросы эпидемиологи, патогенеза, клиники и лечения данных микозов. Однако за последнее десятилетие изменились спектр возбудителей и клинические проявления  трихофитии, что указывает на необходимость дальнейшего изучения этнологического своеобразия и клинических особенностей последней.   Проблеме патогенеза трихофитии, в том числе и изучению процессов иммуногенез при данном микозе,  посвящены  исследования   Ю.А.  Медведева (1989) и других авторов [8].

Характерной особенностью всех дерматомикозов и трихофитии у собак, в частности, является видоизменение микробиоты. Если раньше наиболее частыми возбудителями дерматомикозов были антропофильные грибы, то сейчас на их долю приходится не более 1% микобиоты. Основными возбудителями микроспории и трихофитии стали зоофильные грибы. Для трихофитии — это Trichophyton verrucosum и T. mentagrophytes var. gypseum [5].

Цель работы: изучить особенности трихофитии у собак, составить историю болезни щенка с диагнозом трихофития.

Предмет работы: трихофития.

Объект работы: щенок с диагнозом трихофития.

Задачи работы:

1. Дать понятие трихофитии, эпизоотические данные, характеристику возбудителей трихофитии у собак.

2.  Рассмотреть патогенез и клинические признаки трихофитии у собак.

3.  Изучить методы диагностики, лечение и профилактику трихофитии у собак.

4. Составить историю болезни курируемого щенка с диагнозом трихофития.

Методы исследования: анализ литературы по данной теме, синтез, абстрагирование, обобщение, наблюдение,  медицинское исследование.

Объем и структура работы. Курсовая работы изложена на 37 страницах печатного текста. Курсовая состоит из введения, трех глав, включающих параграфы, заключения и списка использованной литературы. Список литературы включает 40 источников, из них 34 отечественных и 6 зарубежных авторов.

ГЛАВА 1. СТРИГУЩИЙ ЛИШАЙ (ТРИХОФИТИЯ) У СОБАК

  1.  Определение болезни. Эпизоотические данные. Характеристика возбудителей трихофитии у собак

Трихофития — распространенное среди дерматомикозов собак заболевание, основными возбудителями которой являются Trichophyton verrucosum и Trichophyton mentagrophytes var. gypseum.  Трихофития — природно-очаговая инфекция, эпидемические особенности и периодичность вспышек которой зависят от географических, экологических и ряда других факторов [11].

Источником инфекции является больной человек, животные или почва. Возбудители устойчивы к действию окружающей среды, их споры в высушенном состоянии сохраняют жизнеспособность в течение нескольких месяцев. Передача происходит при контакте с инфицированным человеком или животным либо через предметы обихода. В возникновении патологических процессов на коже определённую роль играют изменения рН среды. В современных природных условиях трихофития имеет ряд характерных особенностей — изменился видовой состав возбудителей. Основным возбудителем является фавиформный трихофитон, удельный вес которого составляет 80-85 % [7].

Возбудитель данной болезни гриб, относящийся к роду Trichophyton. Мицелий гриба не отличается устойчивостью. Споры же весьма устойчивы: в помещениях сохраняются 4-10 лет, на шерсти животных — 12-15 месяцев, в почве — 1,5 года, в навозе и навозной жиже — 8 месяцев, патологическом материале (кожа, волосы) при высушивании — более двух лет.  Клетки грибов состоят из оболочки протоплазмы, ядра и ряда включений. Имеют в своем составе жир, витамины, гликоген и кристаллы органических солей. В естественных условиях дерматофиты образуют мицелий, распадающийся на артроспоры, а в культуре на питательных средах — обычно обильный и разнообразный рост. Споры образуются внутри и вне мицелия. Большинство грибов являются аэробами [19].

Tr. mentagrophytes — споры мелкие — 3-5 мкм. Культуры растут быстро, колонии появляются на 3-5-й день, зрелые на 14-16-й день. Колонии белые, кремовые, темно-желтые, могут быть порошистые. Бархатистые. Встречаются спиральные окончания спор. Микроконидии многочисленные, округлые или овальные. Артроспоры отсутствуют. Микроконидии булавовидной формы (рис.1) [21].

Рис.1.  Trichophyton mentagrophytes var. gypseum.

Tr. verrucosum — крупноспоровые грибы от 5-ти до 8-ми мкм, поражают волос по типу эктотрикс (рис. 2). Их элементы в большинстве случаев располагаются вне волоса, споровой чехол находится у основания волоса и хорошо выражен. Грибы растут медленно на сусло-агаре или агаре Сабуро. Зрелые колонии появляются на 15-25 день. Колонии белые, серые, кожистые, возвышенные или плоские, складчатые или бугристые, растущий край ровный, лучистый, паутинистый. Мицелий ветвящийся, микроконидии (алейрии) овальные, грушевидные, артроспоры округлой формы. Хламидоспоры терминальные или интеркалярные. Микроконидии удлинённые [34].

Рис.2. Trichophyton verrucosum

Поражения чаще всего обнаруживаются на коже головы (возле носа, глаз), конечностей, шеи; могут быть и на других местах. На пораженных участках вначале наблюдается шелушение кожи и обламывание волос, вследствие чего образуются плешины. Затем на них появляются маленькие, быстро засыхающие пузырьки, покрывающиеся серовато-белыми сухими корками. Участки поражения постепенно увеличиваются, расширяясь к периферии. У больных животных понижается прирост массы тела, снижается качество шерсти и уровень естественной резистентности [10].

Носителями патогенных дерматомицетов являются мыши,  крысы  и  другие  грызуны.  У  собак   и   кошек   стригущий   лишай   возникает   и   легко распространяется при нарушении зоогигиенических правил содержания, поэтому особенно часто  он  встречается  у  бездомных,  бродячих  животных.  Такие животные представляют наибольшую опасность и для  человека  (прежде  всего для детей). Неблагоприятные погодные условия и  поверхностные  повреждения кожи способствуют проявлению стригущего лишая [25].

Наиболее часто микроспория и трихофития поражают молодых животных — щенков и котят в возрасте до 1 года. Распространению заболеваний способствует нарушение зоогигиенических и ветеринарно-санитарных правил содержания, кормления и эксплуатации животных (нарушение нормального микроклимата, скученное содержание, перемещения и перегруппировки животных, а также массовая контактная экспертиза во время выставочных мероприятий) [27].

В последние 30-40 лет зооантропонозную трихофитию с атипичной формой локализации патологического процесса не регистрировали. Преимущественным (97,9%) возбудителем заболевания является Trichophyton verrucosum. В 2011 году на территории Российской Федерации было зарегистрировано 2,3 случая трихофитии на 100000 собак. Наиболее часто трихофития встречается в Южном федеральном округе (показатель заболеваемости составил 5,7 и 6,7 на 100000 собак в 2010 и 2011 гг. соответственно). К регионам с высокой заболеваемостью трихофитией у собак относятся республики Башкортостан, Дагестан, Кабардино-Балкария, Ингушетия, Саха (Якутия). На территории Северо-Западного территориального округа Российской Федерации (РФ) трихофития у собак регистрируется спорадически, хотя в последние годы отмечается тенденция к постепенному росту заболеваемости. Этому способствуют активная миграция населения из южных регионов России и Средней Азии, ослабление ветеринарного контроля, слабый уровень знаний о клинической картине трихофитии специалистов-дерматологов и врачей других специальностей [19].

  1.  Патогенез. Клинические признаки трихофитии у собак

Возбудители трихофитии — антропофильные грибы, поражающие гладкую кожу, волосы и ногти. При обитании на коже воспалительные явления неглубокие, нерезко выраженные. Грибы располагаются в сердцевине волоса.   Инфильтративно-нагноительная трихофития вызывается грибами, паразитирующими на человеке и животных, т.е. относящимися к группе зооантропофильных.  По характеру и свойствам культур на питательных средах они классифицируются как Tr. mentagraphytes (var. gipseum), Tr. verrucosum (var. faviforme). Располагаясь по наружной поверхности волоса и образуя как бы чехол вокруг него. В зависимости от величины спор и их биологических особенностей выделяют мелкоспоровую разновидность, паразитирующую у мелких домашних животных, мышей, крыс, кроликов, морских свинок. Крупноспоровая разновидность обитает у крупных домашних животных -собак, лошадей, коров, телят, овец [39].

Трихофитоны размножаются в тканях, содержащих роговое вещество — керотин, который имеется в роговом слое эпидермиса кожи и в волосе. Возбудитель выделяет токсины и кератолитические ферменты, вызывающие поверхностное воспаление и разрыхление рогового слоя кожи. При условиях, благоприятных для развития, возбудитель проникает к устью волосяных фолликулов и в шейку волоса, разрушает кутикулу, внутреннее волосяное влагалище, корковое вещество, что ведет к нарушению питания волоса и его выпадению. В месте поражения развивается гиперкератоз [2].

Клинические признаки. Инкубационный период длится от недели до месяца. Заболевание протекает хронически и выражается в появлении на коже небольших безволосых пятен округлой формы, покрытых чешуйками и корочками асбестово-серого цвета (рис.3). Чаще всего поражается кожа головы, шеи, конечностей. В запущенных случаях множественные пятна могут сливаться и захватывать значительные участки тела. Зуд отсутствует или слабо выражен [14].

Рис.3. Трихофития у щенка.

При глубокой форме трихофитии у собак происходит нагноение волосяных мешочков, под корками скапливается много гноя. Стригущий лишай может поражать и когти (онихомикоз). В этом случае они становятся толстыми и деформируются. В легких случаях заболевание протекает без зуда. На пораженных местах могут появиться корочки и струпья, которые позже начинают мокнуть. Собака лижет их и пытается чесать. Иногда отмечается обширное поражение кожи. В легких случаях заболевание приводит к выпадению волос и локальному шелушению кожи [18].

ГЛАВА 2. ДИАГНОСТИКА. ЛЕЧЕНИЕ. ПРОФИЛАКТИКА И МЕРЫ БОРЬБЫ ТРИХОФИТИИ У СОБАК

В последние годы отмечается клиническое многообразие трихофитии у собак, наличие атипичных и стертых клинических форм, что, в свою очередь, затрудняет своевременную диагностику. Атипичные формы заболевания необходимо дифференцировать с простым лишаем у собак, розовым лишаем Жибера, псориазом, микробной и себорейной экземой, атопическим дерматитом,  гидраденитом,  хронической  пиодермией,   вульгарным сикозом [20].

Поверхностная, инфильтративная и нагноительная формы трихофитии представляют собой последовательные стадии развития патологического процесса. Клиническая картина поверхностной трихофитии достаточно характерна. У собак появляются один или несколько очагов розового цвета, округло-овальной формы, с четкими границами, шелушением; по периферии очагов могут располагаться фолликулярные узелки. При инфильтративной форме очаги поражения резко очерчены, кожа гиперемирована, отечна, инфильтрирована и несколько возвышается над общим уровнем, могут встречаться единичные пустулы, корочки гнойно-геморрагического характера. При развитии процесса на коже часто поражаются пушковые волосы, что приводит к развитию остиофолликулитов; при поражении головы или области бороды и усов волосы обламываются. Нагноительная форма трихофитии у собак чаще развивается на волосистой части головы либо в зоне роста бороды и усов вследствие дальнейшего прогрессирования микотического процесса. Гиперемия кожи в области очага поражения усиливается, появляются множественные фолликулиты, сливающиеся в массивный инфильтрат, значительно выступающий над поверхностью кожи и болезненный при пальпации.  Как правило, при нагноительной форме трихофитии наблюдается увеличение регионарных лимфатических узлов, повышение температуры тела, нарушение общего состояния животного. При инфильтративно-нагноительной форме трихофитии волосы в очагах поражения очень легко эпилируются. Зачастую при развитии рубцовых изменений кожи волосы полностью не восстанавливаются [14].

Клинический диагноз трихофитии у собак должен быть подтвержден данными лабораторных исследований. В обычной клинической практике при трихофитии ограничиваются микроскопическим и культуральным методами исследования зараженного материала. Перед микроскопией пораженные объекты (кожные чешуйки, волосы, покрышки пузырьков) предварительно обрабатывают 10%-ным раствором едкого калия или 25%-ным раствором натрия гидроксида для просветления препарата. Поэтому часто этот метод диагностики называют КОН-тестом. Микроскопическая идентификация микромицетов напрямую в клиническом образце является быстрым диагностическим методом, однако наличие ложноотрицательных результатов более чем в 15% случаев указывает на недостаточную специфичность и чувствительность метода. Данным методом можно выявить наличие дерматомицетов, но идентификация их не представляется возможной. Также этот тест ограничивает субъективная оценка врача-лаборанта. Так, чувствительность прямой микроскопии при грибковом поражении головы животного, по данным ряда авторов, варьирует от 67 до 91% [31].

С целью повышения специфичности и чувствительности разработан ряд методик, позволяющих просто и быстро идентифицировать различные виды микромицетов. В микологических лабораториях просветление препаратов для микроскопического исследования проводят 15-30%-ным раствором КОН, в который добавляют 5-10%-ный раствор темно-синих чернил фирмы «Паркер» (Parkers Superchrome Blue-Black Ink). При этом методе гифы и споры дерматомицетов окрашиваются в голубой цвет [25].  

В последнее время разработан и внедрен в практику новый метод микроскопии нативных препаратов с окраской калькофлюором белым. Этот реагент в качестве отбеливающего средства используется в текстильной и бумажной промышленности. Совместное применение калькофлюора белого с КОН позволяет выявлять как молодые, так и зрелые гифы дерматомицетов. Применение метода окраски калькофлюором белым при микроскопической диагностике дерматомикозов позволяет на 10% увеличить выявляемость грибковой инфекции по сравнению со стандартным КОН-методом. Краска флуоресцирует в ультрафиолетовом свете (при коротковолновом облучении). Визуализация проводится под флуоресцентным микроскопом [40].

Для окрашивания гистологических срезов волос широко применяют метод PAS (периодическая кислотная реакция) окрашивания. Последний мало отличается от процедуры окрашивания тканевых срезов и сопровождается окраской определенных гликанов (полисахаридов), находящихся в клеточной стенке дерматомицетов.  С целью выявления наиболее информативного метода диагностики J. Weinberg и соавт. сравнили четыре диагностических теста, а именно: микроскопический, культуральный, метод люминесцентной микроскопии с белым калькофлюором и биопсии ногтя. Авторы установили чувствительность микроскопии в 80%, культурального метода в 59% и биопсии ногтя — в 92% по сравнению с люминесцентной микроскопией с белым калькофлюором, который был выбран в качестве основного метода. Преимуществом всех вышеперечисленных методик микроскопии является их быстрая и простая техника проведения, однако они не дают возможность идентифицировать вид микромицетов [12].

Для установления видовой принадлежности возбудителя проводится посев материала на питательную среду Сабуро с последующей идентификацией выделенной культуры. Известен способ выделения дерматомицетов на плотной среде Сабуро с селективными добавками в виде пенициллина (20000 ЕД) или стрептомицина (40000 ЕД), гентамицина (0,005 г/л), левомицетина (0,16 г/л). Недостатком данной культуральной среды является медленный рост выделяемых культур, что обуславливает длительные сроки диагностики. С целью сокращения сроков роста культур рядом авторов предложены различные модификации состава среды Сабуро. Описан способ культивирования дерматофитов в жидкой среде, содержащей кератин [28].

З.Р. Хисматуллиной и соавт. был разработан способ идентификации дерматомицетов с использованием культуральной среды Сабуро с гидролизатом кератина, позволяющий сократить сроки выделения грибов из материала больного животного. Увеличение скорости роста культур микромицетов происходит при содержании в питательной среде гидролизата кератина выше 20 г/л. Высев дерматофитов предлагаемым способом позволяет проводить идентификацию для  Tr. mentagrophytes var. gypseum на 4-5-й день, для Tr. verrucosum — на 7-8-й день [33].

Одной из попыток усовершенствовать и обеспечить массовую культуральную диагностику дерматомицетов является разработка тестовой среды для дерматофитов (DTM, delmatophyte test medium), содержащей агар Сабуро с антибиотиками, циклогексимидом и индикатором роста культуры дерматофитов. Внедрение среды DTM произвело на свет концепцию «офисного культивирования», при котором появилась возможность наблюдать рост в одноразовых чашках не в специальной лаборатории, а непосредственно в кабинете врача-ветеринара, поскольку рост культуры идет при комнатной температуре [34].

Даже при соблюдении всех правил сбора материала, при наличии оборудования и высоком профессионализме сотрудников лаборатории число выявляемых положительных результатов культурального исследования весьма невелико. Культуральный метод — это специфический диагностический тест, который требует до 8 недель времени, прежде чем результат будет получен. Однако при этом, по данным зарубежной литературы, доля положительного культурального исследования едва достигает 50%, в отечественных исследованиях возбудитель не удается выделить и в 64% случаев. Это обусловлено техническими погрешностями (нарушение правил забора материала, его транспортировки и т.д.), но чаще всего — проведением предшествующей (как правило, местной) антифунгальной терапии у собак их владельцами. Владельцы собак часто занимаются их самолечением с применением наружных антимикотических средств, что приводит не только к изменению клинической картины, но и, естественно, к появлению ложноотрицательных результатов исследования при дерматофитиях [30].

Некоторыми авторами неоднократно предлагались разные диагностические подходы, которые позволили бы усовершенствовать идентификацию грибковой инфекции, дополнить или заменить классические методы. Поэтому, помимо рутинных микроскопического и культурального методов, активно изучаются новые возможности, такие как определение антигена Tr. verrucosum var. verrucosum методом иммуноферментного анализа, а также прямая ДНК-диагностика дерматомицетов. Молекулярно-биологические методики, такие как РСИ — RFLP, ПЦР реального времени и мультиплексный ПЦР, были адаптированы для определения дерматомицетов в клинических образцах. Эти молекулярные методы имеют хороший потенциал для прямого определения дерматомицетов, вместе с тем они еще нуждаются в стандартизации для обычных клинических лабораторий [1].

В 2004 году в России были разработаны и успешно применены в клинических условиях первые генетические зонды для прямой диагностики дерматофитии кожи, волос и ногтей. Данный проект был инициирован в 2003 году Национальной академией микологии с целью изучения возможности применения полимеразной цепной реакции (ПЦР) в выявлении Trichophyton rubrum в клинических образцах. Затем был создан аналогичный метод для Trichophyton mentagrophytes [15].

Лишь несколько авторов сравнивали в клинических образцах КОН-микроскопию и культивирование с ПЦР-методом. В исследовании Nagao и соавт. определили Trichophyton rubrum посредством «вложенной» ПЦР, имеющей мишенью ген внутреннего транскрибируемого спейсера 1 (ВТС1), который был негативен как по данным КОН-микроскопии, так и по данным культивирования. Yan и соавт. сравнили случайно праймируемую ПЦР с общепринятыми методами показали, что случайно праймируемая ПЦР — это более быстрый, чувствительный и специфичный метод для диагностики дерматофитий. Подобных исследований в отношении возбудителей трихофитии у собак не проводилось [28].

В соответствии с общими тенденциями, наблюдаемыми в сфере диагностики, ПЦР реального времени может в будущем стать заменой методам прямой микроскопии и культивирования. Высокая цена ПЦР на сегодняшний день и редкость применения этого метода в ветеринарных клиниках является лимитирующим фактором, но это может измениться в результате уменьшения цен на рынке реагентов и появлением сбережений, вызванных заменой общепринятой диагностики [6].

Таким образом, традиционные доступные методы лабораторной диагностики трихофитии у собак не всегда позволяют определить вид возбудителя и соответственно выбрать оптимальный метод лечения. Назревшая необходимость в методах быстрой и точной идентификации возбудителей открывает перспективы для внедрения в диагностику данного заболевания такого современного, высокочувствительного и специфичного метода исследования, как метод полимеразной цепной реакции [13].

После подтверждения диагноза трихофитии  у собак с лечебной целью вводят 2- или 3- кратно вакцину против трихофитии. Одновременно назначают средства, обладающие фунгистатическими и фунгицидными свойствами. В начальном периоде болезни пораженные места обрабатывают раствором салициловой кислоты на 5%-й настойке йода, а также жидкостями и пастами, обладающими фунгицидными свойствами. Достаточно широко представлен ряд готовых фунгицидных форм: фунгин, нитрофунгин; мази: ундециновая, цинкундан, микосептин, «Ям», клотримазол, вединол, экалин, травоген; раствор «Никлофен», эпацид F, Апит. Смазывать или   втирать в пораженные участки кожи 2-3 раза в день.  Лечебный эффект усиливается при одновременном введении гризеофульвина или низорала. После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи втирают Carbolici cristall, Ricini и др. Ежедневно  втирают  в кожу больного животного для стимуляции роста волос [24].

Профилактика трихофитии у животных создает предпосылки для ликвидации трихофитии у человека. Поэтому меры борьбы направлены на выявление и изоляцию больных животных. Их помещают в специальные изоляторы, не чистят и лечат противогрибными средствами. Подстилку сменяют ежедневно, сжигая старую. При профилактике болезни проводят тщательную очистку и дезинфекцию щелочным формалином (500 г каустической соды, 5,5 л формалина и 94 л воды) стен, ограждений, станков, пола. Инструменты, используемые при лечении, следует хорошо дезинфицировать 30%-ной уксусной кислотой или 5%-ным раствором хлорамина. Подозрительных по заболеванию животных наблюдают или подвергают превентивному лечению.     Также при профилактики трихофитии необходимо соблюдать гигиенические требования, обеспечивать животных витамином А [26].

При каждом случае заболевания собак возникает необходимость медицинского осмотра всех лиц, находящихся в контакте с животными, и членов их семей. Больных изолируют и лечат. Регулярно сменяют и подвергают дезинфекции постельное белье, а также принадлежности для стрижки и бритья, дети должны носить колпак. Активизируют санитарно просветительную работу среди населения, разъясняя опасность заражения от больных животных и людей и пути распространения болезни. Санитарное просвещение детей проводится в школах [19].

ГЛАВА 3. ИСТОРИЯ БОЛЕЗНИ ЩЕНКА С ДИАГНОЗОМ ТРИХОФИТИЯ

Клинический статус

1. Вид: собака

2. Пол: сука

3. Порода: французский бульдог

4. Дата рождения животного: 15.04.2012

4.1. Возраст: 3 мес.

5. Кличка: Марго

6. Окрас: Палевый

7. Владелец и адрес животного: Антонова К.П., Москва.

8. Дата поступления животного: 08.07.12

9. Диагноз предварительный: Трихофития

10. Диагноз заключительный: Трихофития

11. Дата исхода болезни: 18.07.12

Анамнез

1. Anamnesis vitae.  Щенок 3-х месячного возраста, содержится в благоустроенной квартире.  Кормление 3-х разовое; утро, обед, вечер. Примерный рацион щенка: мясо — 300 г/сут., крупа овсяная — 100 г/сут., картофель — 40 г/сут.,  капуста — 40 г/сут., морковь — 30 г/сут., творог — 200 г/сут.  Выгул 3 раза в день по 15 минут.

2. Amamnesis morbi. По словам владелицы, щенок заболел 4 июля вечером, что проявилось в появлении  слегка заметной сыпи на подбородке, затем произошло увеличение площади поражения, на коже образовалась красноватая корка, а также началось выпадение волос в месте поражения. 6 июля у щенка на пораженном месте образовалась лысина с четкими границами.  Из под корки начал течь гной.

                                       Клинический осмотр

1. Общее состояние — Status Praesens. Телосложение: правильное, соответствует породе. Конституция: плотная. Положение: естественное, стоячее. Темперамент: уравновешенный. Упитанность: хорошая.

2. Обследование кожи и шерстного покрова. Кожа сухая непигментированная, эластичная. Волосяной покров блестящий, прочно удерживается, расположен равномерно по всей поверхности тела, кроме пораженной. В области подбородка на коже присутствуют небольшие безволосые пятна округлой формы,  покрытые  чешуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд выражен.  Происходит небольшое нагноение  волосяных мешочков.

3. Обследование лимфатических узлов. Подчелюстные, немного увеличены, подвижные, плотной консистенции, безболезненные, местная температура не повышена. Паховые — подвижны, безболезненны, овально-округлой формы, не увеличены.

4. Обследование слизистых оболочек.  Слизистая оболочка конъюнктивы розового цвета, блестящая. Без повреждений. Слизистая рта бледно-розовая, пигментирована. Температура тела животного в прямой кишке на момент приема нормальная.

5. Сердечно-сосудистая система. При пальпации сердечная область безболезненная. Перкуссией определены следующие границы сердца: передняя — по переднему краю 3-го ребра; верхняя — по линии лопатко-плечевого сустава; задняя — до 7-го ребра. Абсолютная тупость сердца в 5 — 6-м межреберьях. При аускультации тоны сердца громкие, четкие, ясные. Артериальный пульс на внутренней стороне бедра ритмичный, равномерно наполнен, частота 100 уд/мин.

6.  Дыхательная система. При исследовании носовой полости не обнаружены серозные истечения. Дыхание поверхностное, ритмичное, преобладает брюшной тип дыхания. Частота дыхания: 30 дых. дв./мин.  Пальпацией области гортани и трахеи безболезненна.

7. Пищеварительная система. Аппетит снижен, прием корма и воды — свободный. Слизистая ротовой полости бледно-розового цвета, без повреждений. Язык влажный, розовый с белым налетом. Расположение зубов соответствует возрасту животного. Пальпация глотки безболезненна. Слюнные железы не увеличены, безболезненны. Форма живота симметричная. Брюшная стенка безболезненная, умеренно напряжена. При глубокой пальпации обнаруживается желудок. При пальпации области кишечника болезненность отсутствует, при перкуссии звук тимпанический.

Моторика кишечника умеренная, слышны перистальтические шумы. Кишечник безболезненный, умеренно наполнен. При пальпации печень не увеличена, безболезненна, при перкуссии звук тупой. Область печеночного притупления находится справа от 11-го до 13-го межреберья по линии маклока, слева в области 12-го межреберья.  По словам владелицы при дефекации животное принимает естественную позу. Фекалии плотные без посторонних включений и слизи.

8. Мочеполовая система.  Наружные половые органы собаки без патологических изменений, соответствуют возрасту и полу животного. Истечений из половых органов  нехарактерных для животного не наблюдается. При глубокой пальпации обнаруживаются два тела бобовидной формы — почки, левая прощупывается лучше, вследствие более удобного расположения в области в углу левой подвздошной ямки. Болезненной реакции в области почек и мочевого пузыря не наблюдается. В целом при пальпации щенок ведет себя спокойно. По словам владелицы, мочеиспускание происходит в естественной для возраста и пола собаки позе. Моча прозрачная водянистая.

9. Исследования черепа и позвоночного столба. Череп правильной формы, симметричный, соответствует экстерьеру породы. Позвоночный столб без искривлений. При пальпации реберных и позвоночных отростков не обнаружено признаков остеомаляции или смещений. Хвост прямой купированнный. Последние ребра целые, плотные, без рахитозных четок; межреберные пространства ровные.

10. Нервная система. Общее состояние животного угнетенное. Координация движений правильная. Тактильная и болевая чувствительность сохранены.

11. Органы чувств. Постановка глаз правильная, без отклонений. Глазные среды чистые, зрачки слегка расширены, реакция зрачков на свет не замедлена. Помутнений роговицы нет. Радужная оболочка нормального карего цвета, насколько можно судить. Слух не ослаблен, наружные ушные раковины целостные, правильной формы, без покраснений. Неестественные истечения из слуховых отверстий отсутствуют.

Лабораторные исследования

  1.  Общий анализ крови, общий анализ мочи.

Общий анализ мочи от  8.07.12.  Цвет  мочи  соломенно-желтый. Белок            отрицательно. Моча прозрачная. Эпителий (плоский) 1-2 в п/з. Лейкоциты 1-2 в п/з. Реакция   кислая  Уд. Вес  1010. Заключение: в пределах нормы.

     Общий  анализ крови от 8.07.12.

Эритроциты            4.5*1012 /л

Нb                           134 г/л

ЦП                           0,93

Лейкоциты               8,0*109

Нейтрофилы             7

Палочкоядерные        0

Сегментоядерные      61

Лимфоциты              29

Моноциты                3

СОЭ                         10 мм/ч

Заключение: в пределах нормы.

2.Биохимический анализ крови.

      Биохимический анализ крови от 8.07.12.

      Общ. Белок             74  г/л  

      Билирубин общ.     19,4  мкмоль/л  

       Креатинин             0,08 мкмоль

      Тимоловая проба    2,0 Ед

      АСТ                       14,8 ед/л

      АЛТ                       21,6 ед/л

      Заключение: в пределах нормы.

3. Анализ на грибы пораженного участка кожи щенка.

Обнаружены грибы Trichophyton mentagrophytes var. gypseum.

4. Анализ кала на яйца глистов.

     Яиц глистов не обнаружено.

Диагноз и его обоснование

  На основании данных анамнеза и клинического исследования животного установлен диагноз: трихофития.

Прогноз лечения

  При соблюдении всех пуктов плана лечения щенка, прогноз благоприятный ввиду своевременного обращения в лечебное учреждение и некоторой компетентности хозяина — собаковода со стажем.

План лечения

  Лечение трихофитии комплексное.  Для устранения этиологического фактора болезни животному необходимо создать оптимальные зоогигиенические условия содержания и кормления. С лечебной целью вводят 2- или 3- кратно вакцину против трихофитии. Одновременно назначают средства, обладающие фунгистатическими и фунгицидными свойствами. В начальном периоде болезни пораженные места обрабатывают раствором салициловой кислоты на 5%-й настойке йода, а также жидкостями и пастами, обладающими фунгицидными свойствами. Достаточно широко представлен ряд готовых фунгицидных форм: фунгин, нитрофунгин; мази: ундециновая, цинкундан, микосептин, «Ям», клотримазол, вединол, экалин, травоген; раствор «Никлофен», эпацид F, Апит.  Смазывать или   втирать в пораженные участки кожи 2-3 раза в день.

Лечебный эффект усиливается при одновременном введении гризеофульвина или низорала. После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи втирают Carbolici cristall, Ricini и др. Ежедневно  втирают  в кожу больного животного для стимуляции роста волос.

Рецепты

1. Rp.: Acidi salicylici 1,0

T-rae jodi spirituosae 5% 10,0

M.D.S. Наружное. Пораженные участки кожи и окружающие здоровые ткани смазывать несколько раз.

2. Rp.:   Sol.   Fuxini   spirituosae 10,0 ml

Sol. Phenoli 5 % 100,0 ml

Ac. borici 1,0

Resorcini 10,0

Acetoni 5,0  

M.D.S.  Фунгицидное средство. Наносить на пораженные участки кожи (жидкость Кастеллани).

3. Rp.: Sol. Fungini 20 ml

D.S. Смазывать пораженные участки кожи 2-3 раза в день.

4. Rp.: Tab. Griseofulvini 0,125  N.40

D.S. Внутрь по 1 таблетке  по 1 таблетке 2 раза в день — 1 неделю.

5.  Rp.: 01. Ricini 25,0

Tannini 5,0

Spiritus aethylici 95 % 150, 0

Ol. Sinapis actherei 2,0

M.D.S.   Ежедневно   втирать в кожу для стимуляции роста волос.

Течение болезни

Дата

t °C

Пульс

ЧД

Симптомы

Лечение

8. 07.12

37, 6

100

30

Угнетенное состояние, общая слабость, повы-шенная температура тела, увеличение регио-нарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безво-лосые пятна округлой формы,  покрытые  че-шуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд.  Нагноение  воло-сяных мешочков.

Введение вакци-ны против три-хофитии. Сма-зывание пора-женных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 раза в день. Гризеофульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

9. 07.12

37,5

99

32

Угнетенное состояние, общая слабость, повы-шенная температура тела, увеличение регио-нарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безво-лосые пятна округлой формы,  покрытые  че-шуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд.  Нагноение  воло-сяных мешочков.

Ухудшений не наблю-дается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

10.07.12

37,4

87

34

Угнетенное состояние, общая слабость, повы-шенная температура тела, увеличение регио-нарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безво-лосые пятна округлой формы,  покрытые  че-шуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд.  Нагноение  воло-сяных мешочков.

Ухудшений не наблю-дается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

11.07.12

37,2

97

29

Угнетенное состояние, общая слабость, повы-шенная температура тела, увеличение регио-нарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безво-лосые пятна округлой формы,  покрытые  че-шуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд.  Нагноение  воло-сяных мешочков. Ухуд-шений не наблюдается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

12.07.12

37,3

94

30

Угнетенное состояние, общая слабость, повы-шенная температура тела, увеличение регио-нарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безво-лосые пятна округлой формы,  покрытые  че-шуйками  и  корочками  асбестово-серого цвета.  Зуд не выражен.  Нагноение  волосяных мешочков уменьша-ется. Ухудшений не наблюдается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

13.07.12

37,2

85

31

Общее состояние улу-чшилось, температура тела снизилась, увели-чение регионарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безволосые пятна округлой формы,  покрытые  чешуйками  и  корочками  асбес-тово-серого цвета.  Зуд не выражен.  Нагное-ние  волосяных ме-шочков уменьшается. Ухудшений не наблю-дается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

14.07.12

37,1

90

25

Общее состояние улу-чшилось, температура тела снизилась, увели-чение регионарных лимфоузлов, снижение аппетита. В области подбородка на коже небольшие безволосые пятна округлой формы,  покрытые  чешуйками  и  корочками  асбес-тово-серого цвета.  Зуд не выражен.  Нагное-ние  волосяных ме-шочков уменьшается. Ухудшений не наблю-дается.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

15.07.12

37,1

88

28

Общее состояние улу-чшилось, температура тела снизилась, регио-нарные лимфоузлы уменьшились, аппетит улучшился. Зуд не выражен.  Нагноение  волосяных мешочков прекратилось. Шелу-шение пораженного участка уменьшилось.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

16. 07.12

37

94

30

Общее состояние удов-летворительное, собака подвижна, температура тела в норме, аппетит в норме. Зуда нет.  Наг-ноение  волосяных ме-шочков прекратилось. Шелушение не выра-жено.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

17.07.12

36,9

99

30

Общее состояние в норме, собака под-вижна, температура те-ла в норме, аппетит в норме. Пораженные участки кожи восста-навливаются.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

18.07.12

36,9

98

29

Общее состояние в норме, собака под-вижна, температура те-ла в норме, аппетит в норме. Пораженные участки кожи восста-навливаются.

Смазывание по-раженных мест раствором сали-циловой кисло-ты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 р. в день. Гризео-фульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день.

После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи необходимо втирать Carbolici cristall, Ricini и др. Ежедневно  втирают  в кожу больного животного для стимуляции роста волос.

Рис. 4. График температуры, пульса и частоты дыхания щенка с трихофитией  в дни протекания болезни.

Эпикриз

 

Трихофития — распространенное среди дерматомикозов собак заболевание, основными возбудителями которой являются Trichophyton verrucosum и Trichophyton mentagrophytes var. gypseum. Трихофития у собак встречается чаще чем другие дермофитии. Болеют обычно щенки, плохо питающиеся собаки, а также животные с пониженным за счет другого заболевания иммунитетом. Источником возбудителя являются больные и переболевшие животные. Это кожное заболевание передается собакам от других животных через поврежденные участки кожи, путем контакта со спорами, находящимися в земле, на игрушках и мебели.

Больная собака, французский бульдог, сука, 15.04.2012 г.р. находится на лечении с 08.07. по 18.07. 2012 года с диагнозом: нагноительная трихофития подбородка (1 очаг). При поступлении владелица собаки предъявила жалобы на появление у щенка слегка заметной сыпи на подбородке, затем произошло увеличение площади поражения, на коже образовалась красноватая корка, а также началось выпадение волос в месте поражения. 6 июля у щенка на пораженном месте образовалась лысина с четкими границами.  Из под корки начал течь гной.

Проведено обследование: физикальное, анализ на грибы, ОАК, ОАМ, БХ крови.

Проведено лечение: введена вакцина против трихофитии. Пораженные места в течение 10 дней обрабатывались раствором салициловой кислоты на 5%-й настойке йода, а также фунгином и жидкостью Кастеллани 2 раза в день. Одновременно вводился гризеофульвин внутрь по 1 таб. 2 раза в день. После выздоровления для ускорения роста волос в пораженные участки кожи рекомендовано втирание Carbolici cristall или Ricini ежедневно.

Заболевание у щенка протекало с типичными клиническими признаками. Назначенное лечение оказало должный эффект, т.к. выздоровление наступило в минимальные сроки. Рекомендуется более расширенный рацион и более полноценное питание.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Трихофития — (Trichophytosis), трихофитоз, стригущий лишай, инфекционная болезнь животных и человека, вызываемая несовершенными грибами рода Trichophyton, характеризующаяся у животных появлением на коже участков с обломанными волосами, покрытых корками и чешуйками. Распространена в большинстве стран мира, в том числе и в России.
Т. verrucosum вызывает главным образом трихофитию крупного рогатого скота, зебу, буйволов, верблюдов, реже серебристо-чёрных лисиц, песцов. T. mentagrophytes (gypseum) — основной возбудитель трихофитии собак, кроликов, серебристо-чёрных лисиц, песцов, мышей-полёвок, сусликов, а также зверей, содержащихся в зоопарках, питомниках и др.[17].

Трихофитией болеют животные всех видов и возрастов. Источники инфекции — больные и переболевшие животные. Факторы передачи — инфицированные помещения, инвентарь. Мышевидные грызуны — постоянный резервуар T. mentagrophytes в природе.  Инфицированные возбудителями трихофитии сено, солома, пух, волос, шерсть служат источником заражения кроликов, пушных зверей, крупного рогатого скота, овец, лошадей. Микротравмы способствуют внедрению возбудителя. В зверохозяйствах, кролиководческих комплексах, откормочных совхозах, питомниках, где концентрируется большое поголовье животных, трихофития может протекать как энзоотия [21].

Переболевшие трихофитией животные приобретают длительный напряжённый иммунитет. Показатели серологических реакций (РА, РСК) сохраняются лишь 2-3 месяца, через 6-8 месяцев они могут полностью угаснуть.  При поверхностной трихофитии заражение людей (особенно часто детей) происходит при контакте с больным животным и через инфицированные предметы. На коже появляются округлые розовые пятна с чёткими приподнятыми краями и шелушением в центре. В очагах на волосистой части головы волосы разрежены и обломаны. Поражённые ногти — грязно-серые, тусклые, неровные, края их утолщены, крошатся. Глубокая трихофития возникает при заражении грибами, паразитирующими у животных (особенно опасны больные трихофитией пушные звери, собаки, кролики и кошки). Отмечают воспалительные нагноившиеся узлы с корками на поверхности, облысение [35].

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

  1.  Авилов В.М. Ветеринария. — СПб.: Питер, 2006. — 338 с.
  2.  Азаров В.Н. Основы микробиологии и санитарии. — М.: Экономика, 1996. — 205 с.
  3.  Антонов В.Б., Медведева Т. В., Леина Л.М. и др. К вопросу об инфильтративно-нагноительной трихофитии // Успехи медицинской микологии. Т. 8. — М.: Национальная академия микологии, 2006. — С. 185 -187.
  4.  Астраханцев В.И.  Болезни собак. — М.: Колос, 2001. — 258 с.
  5.  Белов Е.П. Болезни собак. — М.: Агропромиздат, 1990. — 368 с.
  6.  Борисов Л.Б. Медицинская микробиология, вирусология, иммунология.- М.: Медицинское информагенство, 2005.- 735 с.
  7.  Воробьев А.А. Медицинская и санитарная микробиология.- М.: Академия, 2003.- 462 с.
  8.  Ветеринарная лабораторная медицина. Интерпретация и диагностика: [собаки, кошки, лошади, жвачные животные, свиньи]. Мейер Д., Харви Дж. – М.: Софион, 2007.- 458 с.
  9.  Глотова Т. И. Дерматомикозы собак и кошек в условиях города//Ветеринария, 1998, № 1. С. 59-61.
  10.  Гинзбург А.Г. Организация и планирование ветеринарного дела. — М.: Аспект-Пресс, 2005. — 492 с.
  11.  Гусев М.В. Микробиология. — М.: Академия, 2009. — 464 с.
  12.  Евсеенко К.А. Новые горизонты медицинской микологии// Мед. новости. — 2003. — Т. 12. — С. 4-9.
  13.  Кашкин П. H, Лисин В. В. Практическое руководство по медицинской микологии. — Л.: Медицина, 1990. -195 с.
  14.  Kyxap E.В. Поиск антигенов для ИФА-диагностики зооантропонозной трихофитии // Проблемы мед. микол. — 2007. — Т. 2. — С. 73 — 74.
  15.  Лещенко П. Н. Лабораторная диагностика грибковых заболеваний. — М.: Медицина, 1987. – 146 с.
  16.  Литвинов A.M. Дерматофитозы кошек и собак (профилактика и лечение)//Ветеринария. № 11, 2000. С.51-53.
  17.  Луферов А.Ф. Методические рекомендации по оздоровлению домашних очагов зооантропонозной микроспории и трихофитии. – Минск: Высшая школа. 1998. — 15 с.  
  18.  Лысак В.В. Микробиология. — Минск: БГУ, 2007. — 426 с.
  19.  Медведева Г. В., Антонов В. Б., Леина Л. М. и др. Трихофития: современные представления об этиологии, клинической картине, особенностях диагностики и терапии // Клин. дерматол. и венерол. — 2007. — Т. 4. — С. 70 — 74.
  20.  Медведев К.С. Болезни кожи собак и кошек  / К.С. Медведев. Киев: ВИМА, 1999.-218 с.  
  21.  Медицинская микробиология. / Под ред. А.М. Королюка, С.Б. Стойчакова.  — СПб.: ЭЛБИ, 2002.- 267 с.
  22.   Микробиология и иммунология. / Под ред. А.А. Воробьева.- М.: Медицина, 2005.- 492 с.
  23.  Минеева Л.А. Микробиология. — М.: Академия, 2010. — 464 с.
  24.  Нуралиев М.Д. Эпидемиология, особенности клиники и совершенствование терапии трихофитии в условиях жаркого климата. — Душанбе, 2007.- 200 с.
  25.  Организация и экономика ветеринарного дела / Под ред. А.Д. Третьякова. — М.: Проспект, 2001. — 260 с.
  26.  Основы микробиологии, вирусологии и иммунологии. / Под ред. Ю.С. Кривошеина.- М.: Высшая школа, 2001.- 224 с.
  27.  Петрович С.В.  Микозы животных. М.: Росагропромиздат. — 1989. — 173 с.  
  28.  Райкис Б. Общая микробиология с вирусологией и иммунологией. — М.: Триада — Х, 2002.- 347 с.
  29.  Саркисов А.Х. Диагностика грибных болезней животных/А.Х. Саркисов, В.П. Королева,  Е.С. Квашнина, В.Ф. Грезин//М.: Колос. — 1971. —  144 с.  
  30.  Справочник ветеринарного врача / Под ред. Н.М. Алтухова. — М.: Колос, 1996. — 352 с.
  31.  Степанова Ж.В., Гребенюк В.Н., Воробьева И.А. и др. Диагностические ошибки при зооантропонозной трихофитии // Вестн. дерматол. — 2001. — Т. 6. — С. 36-38.
  32.  Федюк В.И. Справочник болезней собак и кошек.-  М: Академия. — 2001. — 338 с.
  33.  Хисматуллина 3. Р. Мухамадеева О. Р. Способ выделения дерматофитов//Вестн. дерматол. — 2006. — Т. 2. — С. 25-27.
  34.  Хисматуллина З.Р. , Фахретдинова X. С, Мухамадеева О.Р. Зооантропонозная трихофития. — Уфа: Башкириздат, 2004. – 125 с.
  35.  Arabatzis М, Bruijnesteijn van Coppenraet L.E. S., Kuijper E.J. et al. Diagnosis of common dermatophyte infections by a novel multiplex real-time polymerase chain reaction detection/identification scheme // Br. J. Dermatol. — 2007. — Vol. 157.-P. 681-689.
  36.  Jennings M.B., Rinaldi M.G. Confirmation of dermatophytes in nail specimens using in-office dermatophyte test medium cultures. Insights from a multispecialty survey //J. Am. Podiatr. Med. Assoc. — 2003. — Vol. 93, №3. — P. 195-202.
  37.  Rippon J. W. Medical mycology // The Pathogenic Fungi and the Pathogenic Actinomycetes 3rd ed. — Philadelphia: WB Saunders, 1988.
  38.  WeinbergJ.M., KoestenblattE.K., Tutrone W.D. etal Comparison of diagnostic methods in the evaluation of onychomycosis // J.Am. Acad. Dermatol. — 2003. — Vol. 49, №2. — P. 193-197.
  39.  Yang G. , Zhang M., Li W. et al Direct species identification of common pathogenic dermatophyte fungi in clinical specimens by semi-nested PCR and restriction fragment length polymorphism //Mycopathologia. — 2008. — Vol. 166, №4. — P. 203-208.
  40.  Yan D.  Detection of fungiinliquor workers with tinea corporis and tinea cruris using arbitrarily primed polymerase chain reaction // Zhonghua Lao Dong Wei Sheng Zhi Ye Bing Za Zhi. — 2007. — Vol. 25, №3. — P. 133-135.

PAGE   \* MERGEFORMAT 3

Трихофития ( стригущий лишай )

При этом заболевании, вызываемом микроскопическими грибами Trychoрhyton mentagroрhytes (переносчиком считаются грызуны), на коже возникают характерные округлые проплешины, иногда с незначительными остатками волос.

Симптомы. Поражения обычно располагаются на голове и шее. Заболевание (чаще всего заболевают молодые животные в возрасте до 1 года)  развивается примерно так же, как микроспория, но проявляется главным образом в фолликулярной форме, которая характеризуется обильной экссудацией и образованием серовато-беловатых корок, а вслед за ними — проявлением гнездной алопеции, возникновением множественных очагов облысения. Как и при микроспории, волосы в очагах поражения легко обламываются. Характерен сильный зуд, кошка с ожесточением вылизывает очаги поражения.

Лечение. Очаги смазывают баксиновой мазью или мазью вединол 2 раза в день, маслом чайного дерева, а внутримышечно вводят вакцину вакдерм-F по 0,5 мл или вакцину микродерм. После 2-3 инъекций препарата происходит отторжение корочек с пораженных участков и наблюдается рост новых волос. Обработанные животные сохраняют иммунитет не менее 12 месяцев. Противогрибковое действие оказывает также препарат эпацид-F. Показана обработка ципамом. В схему комплексного лечения показано включать также гамавит, максидин, иммунофан или неоферон. Для ускоренного восстановления волосяных луковиц и шерстного покрова рекомендуются поливитамины «Полезное удовольствие», фитомины для шерсти, гемовит-плюс.

Профилактика. Учитывая, что диагностика и лечение больных дерматомикозами кошек дело непростое, длительное и дорогостоящее, следует запомнить: самый надежный и эффективный способ уберечь ваших любимцев от грибковых инфекций — вакцинопрофилактика. Наиболее эффективны для этой цели отечественные вакцины: вакдерм-F, микродерм. Обе эти вакцины эффективны как для профилактики, так и для лечения. Вдобавок после их использования создается длительный иммунитет.

 

Дерматофитии у собак и кошек

Дерматология, взгляды на дерматологию

Дерматофитии имеют разнообразные клинические проявления, и пошаговый логический подход имеет решающее значение для правильной диагностики.

Розанна МарселлаDVM, DACVD

Доктор Марселла — сертифицированный ветеринарный дерматолог и профессор Университета Флориды. Она является автором более 150 рецензируемых статей и написала несколько книг ( «Руководство по дерматологии лошадей» и «Клинический подход к дерматологическим заболеваниям кошек» ) и участвовала во многих других работах в качестве автора или автора и редактора (напр.г., Руководство BSAVA по дерматологии собак и кошек ). Она была президентом Американского колледжа ветеринарной дерматологии и соредактором журнала Veterinary Dermatology .

Stock-Asso/shutterstock.com

Дерматофиты — это патогенные грибки, вызывающие кожные заболевания у мелких животных и людей; они могут представлять собой серьезную проблему для животных из приютов и домашних животных, которым разрешено длительное пребывание на открытом воздухе. Наиболее распространенные дерматофитные инфекции, диагностируемые у мелких животных, вызываются Microsporum canis , Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes , а наиболее распространенными источниками инфекции являются кошки ( M canis ), зараженная почва ( M 0 gyps08 90). и грызуны ( T mentagrophytes ). 1

Хотя дерматофиты передаются при контакте с артроспорами, контакт с артроспорами не всегда приводит к установлению инфекции. Устойчивость к инфекции связана с сильным клеточно-опосредованным ответом. 2 Инфекция чаще развивается у очень молодых, престарелых или подвергнутых стрессу животных. 3 У кошек из приютов инфекции дерматофитами, отличными от M. canis , встречаются редко и, по-видимому, не представляют сложности для лечения; большинство кошек достигают микологическое излечение в течение 3 недель лечения. 4

КЛИНИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ И ДИАГНОЗЫ

Дерматофитозы имеют разнообразные клинические проявления. Поскольку дерматофиты являются кератинофилами, их мишенями являются волосы и ногти.

Фолликулит

Когда дерматофиты поражают волосы, они приводят к фолликулиту ( РИСУНОК 1 ). Инфекции проявляются в виде папул и пустул (, РИСУНОК 2, ), которые быстро разрываются, оставляя эпидермальные воротнички, круглые участки алопеции (, РИСУНОК 3, ) и корки.Дифференциальный диагноз фолликулита включает стафилококковую инфекцию ( РИСУНОК 4 ) и, особенно у собак, демодекоз ( РИСУНОК 5 ). Таким образом, при обследовании собаки с признаками фолликулита проведите цитологическое исследование на наличие внутриклеточных бактерий и глубокие соскобы кожи, чтобы исключить демодекоз.

По опыту автора, бактериальный фолликулит обычно встречается у собак чаще, чем дерматофитная инфекция; однако не делайте предположений и не пропускайте этапы диагностики.Дерматофития может представлять серьезную проблему для собак определенных пород, таких как йоркширские терьеры. Очень важно пройтись по списку дифференциальных диагнозов и последовательно логично обработать каждый случай. Другие причины пустулезной болезни (например, листовидная пузырчатка), которые не связаны с фолликулами, также следует учитывать при обследовании пациентов с выпадением волос и образованием корочек. Хорошим начальным подходом является исключение причин фолликулита, сначала путем цитологического исследования, глубоких соскобов кожи и посева грибков.

Узловые поражения

Иногда дерматофиты случайно инокулируются в дерму (например, во время травмы), что приводит к тяжелой воспалительной реакции и развитию узелкового поражения, называемого керионом. 5 Это узловатое поражение обычно встречается на переносице у собак, которые любят копать. Даже после гибели дерматофитов тяжелая воспалительная реакция может сохраняться. Другим проявлением нодулярной болезни, вызванной дерматофитами, является дерматофитная мицетома, называемая также псевдомицетомой.Эта необычная кожная/подкожная инфекция в основном встречается у персидских кошек и проявляется в виде узелков с дренажными путями, как правило, на спине. Эти кошки обычно представлены, потому что они не реагируют на терапию антибиотиками.

Для пациентов с узловыми поражениями важно определить, являются ли они результатом инфекционных агентов. Часто требуется биопсия для гистопатологии и посева, но также следует выполнить цитологическое исследование, поскольку мазки-отпечатки могут быть диагностическими. 5

Поражения ногтей

Дерматофиты могут поражать подушечки лап ( РИСУНОК 6 ) и ногти ( РИСУНОК 7 и 8 ).Ногти, зараженные дерматофитами, становятся ломкими и деформированными, особенно у собак с инфекцией M gypseum . 6

Дифференциальный диагноз деформированных и ломких ногтей может включать системную люпоидную ониходистрофию или генетически унаследованные дистрофии, не являющиеся иммуноопосредованными. При рассмотрении этих случаев, прежде чем рассматривать биопсию или другие инвазивные диагностические тесты, возьмите образцы пораженных ногтей (например, обрезки ногтей) и отправьте их на грибковую культуру.

ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ

В недавно опубликованном клиническом консенсусном документе по дерматофитии у мелких животных сделан вывод после обзора современной литературы о том, что ни один диагностический тест не может быть признан золотым стандартом для диагностики дерматофитии. 1 Авторы заявляют, что диагноз ставится с помощью дополнительных методов выявления активной инфекции, таких как прямое исследование артроспор на инфицированных волосах и грибковая культура волос, собранных стерильной зубной щеткой.

Лампа Вуда

Использование лампы Вуда по-прежнему рекомендуется в качестве инструмента скрининга, и в настоящее время признано, что большинство инфекций, вызванных M canis , флуоресцируют яблочно-зеленым светом под лампой Вуда. В зависимости от исследования положительный результат колеблется от 91% до 100%; более высокие проценты были обнаружены в исследованиях экспериментально индуцированной инфекции. 1 Способность к флуоресценции развивается после первой недели заражения и может сохраняться на кончиках волосков после исчезновения инфекции. 1 Авторы консенсусного документа пришли к выводу, что лампа Вуда является лучшим инструментом для первоначального скрининга, чем для контроля за успехом лечения. 1 Клиницисты должны знать, как правильно пользоваться лампой Вуда. Осмотр следует начинать с головы пациента, медленно продвигаясь назад, удерживая лампу близко к коже (от 2 до 4 см), отличая яблочно-зеленую флуоресценцию волос при дерматофитии от ложной синей флуоресценции, которую можно увидеть при скейлинге и некоторых средствах для местного применения. . 1

Культура грибов

В течение десятилетий золотым стандартом диагностики дерматофитов была культура грибов. Однако реальность такова, что этот подход просто указывает на наличие или отсутствие спор на волосках. Успех этого подхода частично зависит от метода отбора проб и области, выбранной для выращивания. Методом, широко описанным в литературе, является подход с использованием зубной щетки, который может обнаруживать бессимптомных животных-носителей. В 2017 году Ди Маттиа и соавт.сообщили о важности правильной инокуляции образцов на среду для культивирования грибов. Прижатие зубной щетки к пластине является оптимальным способом максимизировать рост M canis и свести к минимуму рост загрязнений. 7

Прямой осмотр

Выщипывание волос с краев существующего поражения считается полезным для конкретного решения вопроса о том, может ли поражение быть вызвано дерматофитом, хотя выщипывание волос все же может привести к отрицательным результатам. 1 Предметные стекла с 10-20 выщипанными волосками в минеральном масле можно исследовать под микроскопом на наличие артроспор.

Полимеразная цепная реакция

В последние годы внимание привлекло использование полимеразной цепной реакции (ПЦР) для диагностики дерматофитии, и результаты исследований различаются в зависимости от используемой ПЦР. В 2018 году Мориелло и соавт. обнаружили, что количественная ПЦР (кПЦР) образцов культуры грибка зубной щетки поражений у кошек из приюта была надежным тестом для подтверждения заболевания. 8 Результаты количественной ПЦР и культуры грибов совпали в 94% случаев. КПЦР также правильно идентифицировала 2 кошек как неинфицированных. Микологическое излечение было правильно определено для 65,2% кошек с помощью количественной ПЦР-анализа видов Microsporum и 84,8% с помощью анализа M canis .

Кафарчия и др. сообщили о высокой точности одноступенчатой ​​ПЦР для собак (площадь под кривой [AUC]>90), но лишь умеренной точности для кошек (AUC = 78,6). 9 В том же исследовании вложенная ПЦР была точной (AUC = 93.6) для образцов от кошек и достигнуты более высокие специфичность (94,1% и 94,4%) и чувствительность (100% и 94,9%) для образцов от собак и кошек соответственно. В другом исследовании, в котором сравнивалась эффективность вложенной ПЦР с прямой микроскопией и культурой, было обнаружено, что степень согласия выше для гнездовой ПЦР и прямой микроскопии (94,4%), чем для культуры (83,3%). 10 Подобно грибковым культурам, положительный ПЦР не подтверждает активную инфекцию, и результаты необходимо интерпретировать в контексте клинических признаков.В недавнем исследовании также сообщалось, что ПЦР менее чувствительна, чем сообщалось ранее, но более специфична, что увеличивает риск ложноотрицательных результатов. 11

ПРОЦЕДУРЫ

Успешное лечение дерматофитоза у собак и кошек требует сочетания местного лечения, системного лечения и дезинфекции окружающей среды.

Местное лечение

Поскольку дерматофития передается при контакте с артроспорами, местная терапия является важным компонентом лечения.Местное лечение помогает ускорить устранение инфекции и уменьшить выделение артроспор в окружающую среду.

Подрезка

На протяжении десятилетий стрижка была необходимой частью лечения дерматофитии; однако клипирование в настоящее время пересматривается, поскольку клипирование всего тела вызывает стресс, а общие микротравмы кожи могут усугубить инфекцию. Таким образом, вопрос об обрезке следует решать в каждом конкретном случае; стрижка не требуется для короткошерстных животных. 1

Дипы, шампуни и ополаскиватели

В Соединенных Штатах по-прежнему рекомендуются известково-серные пропитки. Несколько исследований задокументировали эффективность известково-серных растворов, и применение два раза в неделю более эффективно, чем один раз в неделю. 1,12-14 Дип имеет остаточное действие на шерсть, в то время как действие шампуней короче. 13 По опыту автора, распространенными побочными эффектами серной извести являются сухость и пожелтение. Хотя в более ранних исследованиях сообщалось о потенциальном риске возникновения язв во рту у кошек, которые облизывают свою шерсть, пока она еще мокрая, новые исследования не подтвердили эти выводы, что повышает вероятность того, что в более ранних исследованиях использовались более концентрированные растворы. 1 Большинство современных составов известковой серы для ветеринарного применения содержат 97,8% насыщенной известковой серы, которую применяют при разбавлении 8 унций/галлон воды.

Когда клиенты возражают против запаха серы, другие варианты, доступные в Соединенных Штатах, включают шампуни и ополаскиватели. Среди шампуней ни хлоргексидин, ни миконазол по отдельности не считаются эффективным средством. Наиболее эффективным местным лечением является комбинация миконазола и хлоргексидина, используемая два раза в неделю. 15,16 Хотя клиницисты обычно считают, что хлоргексидин обладает противогрибковыми свойствами, эффективность хлоргексидина при дерматофитии оказалась низкой. 17

Местное применение Энилконазол также эффективен для лечения дерматофитоза у мелких животных 18 , но в настоящее время недоступен в США. В странах, где доступен ополаскиватель с энилконазолом, он считается очень эффективным местным средством против дерматофитии. 19 Хотя энилконазол обычно хорошо переносится, сообщалось, что он вызывает гиперсаливацию, мышечную слабость и незначительное повышение концентрации аланинаминотрансферазы (АЛТ) в сыворотке персидских кошек. 16

Эффективность шампуней, содержащих кетоконазол, для животных не оценивалась в исследованиях in vivo. Исследования in vitro подтверждают эффективность кетоконазола, но клинических испытаний шампуня с кетоконазолом при дерматофитии у мелких животных не публиковалось. 19,20

Точно так же нет исследований in vivo, подтверждающих использование местного климбазола для лечения дерматофитоза у мелких животных. Исследования in vitro показали хорошую остаточную активность 0,5% климбазола с хлоргексидином. 19

Было опубликовано только 1 исследование тербинафина для местного применения , в котором сообщалось о хорошем ответе. 20

Системное лечение

Идеальным выбором для системной терапии являются кератинофильные и липофильные препараты, которые накапливаются в коже и кератине. В настоящее время наиболее эффективным системным лечением как для собак, так и для кошек является пероральный прием итраконазола или перорального тербинафина. 1

Итраконазол имеет длительный период полураспада у кошек 21 и большую склонность к накоплению в шерсти и коже. Это свойство позволяет использовать пульс-терапию, что снижает стоимость терапии; ежедневное введение в течение 1 недели, затем 1 неделя приема и 1 неделя перерыва показали клинический успех. 22 Другие начали пульс-режим только после ежедневного приема препарата в течение 4 недель. 23 Наиболее часто используемая доза итраконазола для собак и кошек составляет 5 мг/кг один раз в день. Поскольку итраконазол влияет на цитохром P450, важно учитывать лекарственные взаимодействия и снижать дозы других лекарств, если их метаболизм затрагивается этим взаимодействием (например, циклоспорина).

Следует избегать составных форм итраконазола; несколько исследований показали, что комбинированные составы имели субтерапевтическую ценность у леченных животных. 24,25 Непатентованный итраконазол кажется более эффективным, хотя терапевтический мониторинг полезен, поскольку концентрация может сильно варьироваться. 23 Если отмечена неэффективность лечения, переключитесь на продукт, разработанный для людей, Sporanox (Janssen Pharmaceuticals, janssen.com). Также обратите внимание, что при использовании в более высоких дозах итраконазол, как сообщается, вызывает васкулит у собак. 26 Клиницистам следует учитывать возможность этого побочного эффекта при использовании этого препарата, хотя высокие дозы обычно назначаются при системном микозе и не рекомендуются при дерматофитии. Жидкая форма (Итрафунгол; Эланко, эланко.com) доступен для использования у кошек. Сообщаемые побочные эффекты итраконазола включают повышение уровня ферментов печени и анорексию у собак, а также снижение потребления пищи, депрессию и повышение концентрации АЛТ в сыворотке у кошек. 1

Тербинафин очень кератинофилен и накапливается в волосах, 27 позволяет проводить пульс-терапию, что снижает стоимость и побочные эффекты. Тербинафин обладает отличной активностью против дерматофитов, и одно исследование показало, что он эффективен и может представлять собой подходящую и более дешевую альтернативу для кошек из приютов. 14 Обычно используемый диапазон доз тербинафина составляет от 20 мг/кг 14 до 40 мг/кг; 28 эффективность увеличивается при более высоких дозах. Хотя тербинафин не оказывает такого же влияния на цитохром Р450, как азолы, его метаболизм в значительной степени происходит в печени; при длительном лечении может потребоваться мониторинг показателей печени.

Кетоконазол эффективен против дерматофитов, хотя и не так хорош в лечении, как итраконазол или тербинафин.Кетоконазол применялся у кошек; 29 однако, поскольку он обычно плохо переносится и часто вызывает тошноту и анорексию, лучше зарезервировать это лекарство для собак. Кетоконазол обычно назначают собакам в дозе 5 мг/кг перорально каждые 12 часов, и лучше всего принимать его с пищей, чтобы свести к минимуму побочные эффекты и увеличить абсорбцию.

Флуконазол имеет низкую активность против дерматофитов in vitro 30 и больше не рекомендуется для лечения дерматофитии.Флуконазол также растворим в воде и не обладает такой же способностью, как итраконазол и кетоконазол, накапливаться в коже и кератине.

Гризеофульвин исторически использовался для лечения дерматофитии, но теперь доступны более безопасные и эффективные варианты. Таким образом, гризеофульвин редко выбирается в качестве лечения.

Луфенурон ранее рассматривался как возможное лечение, но исследования не показали его эффективности. 31,32 Таким образом, луфенурон не следует рассматривать как вариант лечения.

Вакцины не предотвращают развитие дерматофитии 33 и поэтому не должны использоваться для этой цели.

Обеззараживание окружающей среды

Обеззараживание окружающей среды является основной частью лечения дерматофитоза. Это также сводит к минимуму ложноположительные результаты посева грибков. Несмотря на то, что разделение животных с целью минимизации заражения 34 пропагандировалось на протяжении десятилетий, изоляция должна проводиться с осторожностью, поскольку она может быть очень стрессовой, особенно для молодых животных. 1 Таким образом, продолжительность изоляции должна быть сведена к минимуму до уровня, необходимого для обеззараживания окружающей среды. Потребность в длительной изоляции может быть снижена за счет еженедельной уборки и использования местной терапии.

Исследования показали, что еженедельная очистка очень эффективна для удаления инфекционных артроспор. 35,36 Наиболее важной частью процесса обеззараживания является собственно тщательная очистка, включающая удаление мусора и волос. Очистка может быть выполнена безрецептурными бытовыми моющими средствами. 37 Твердые поверхности можно дезинфицировать бытовым отбеливателем с концентрацией 1:100 или ускоренной перекисью водорода. 37,38 Машинная стирка мягких тканей должна выполняться с использованием самого длинного цикла, чтобы максимально удалить споры.

МОНИТОРИНГ УСПЕХА ЛЕЧЕНИЯ

Клиническое излечение не всегда означает микологическое излечение. Таким образом, отрастание волос и клинический вид пациента могут быть недостаточными критериями для принятия решения о продолжительности лечения. В настоящее время рекомендуется, чтобы контроль за терапией и установление полного излечения пациента основывались на сочетании разрешения клинических признаков и отрицательной грибковой культуры. 1 Степень заражения можно контролировать путем еженедельного посева культур. 1

Мертвые грибковые организмы все еще можно обнаружить с помощью ПЦР. Таким образом, положительный результат ПЦР вместе с исчезновением признаков может указывать на то, что у пациента все еще есть споры на шерсти, а не на реальную инфекцию. Пациенты могут, например, подхватить споры из зараженной среды, несмотря на то, что у них выработался иммунитет и они больше не инфицированы активно. Эти животные могут представлять собой источник инфекции для окружающих их людей, и может потребоваться дальнейшее обеззараживание окружающей среды. Культуры грибов легко доступны на практике и могут помочь в мониторинге лечения. В случае сомнений культуру грибов можно повторить, чтобы убедиться, что результаты действительно отрицательные.

Длинношерстные кошки имеют склонность к субклинической дерматофитии 39 и поэтому являются потенциальными переносчиками. Имея дело со вспышкой дерматофитии в доме с несколькими кошками, каждую кошку следует культивировать, чтобы определить, какие из них действительно отрицательные, а какие клинически нормальны, но несут на своей шерсти артроспоры и потенциально могут быть источником инфекции для других. 40

ОБЗОР

Дерматофития — зоонозное, но излечимое заболевание. При обследовании пациентов с фолликулитом пошаговый логический подход имеет решающее значение для правильной диагностики. Диагноз может быть поставлен на основании комбинации клинических признаков и положительных результатов грибковой культуры. При отсутствии клинических признаков положительные результаты ПЦР или посева могут просто указывать на наличие артроспор на шерсти без активной инфекции. Поскольку дерматофиты не являются частью обычной флоры, необходимо определить источник артроспор.Обследование с помощью лампы Вуда по-прежнему рекомендуется для быстрого скрининга инфекции M canis . Большинству пораженных пациентов требуется сочетание местной и системной терапии. Наиболее эффективными пероральными препаратами являются итраконазол и тербинафин, которые можно сочетать с местными растворами извести и серы два раза в неделю и/или шампунями, содержащими миконазол и хлоргексидин. Установление полного излечения пациента должно поддерживаться сочетанием разрешения клинических признаков и отрицательного результата посева.

Ссылки

1. Мориелло К.А., Койнер К., Патерсон С., Миньон Б. Диагностика и лечение дерматофитии у собак и кошек: Клинические согласованные рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии. Вет Дерматол . 2017;28(3):266–e68.

2. ДеБоер Д.Дж., Мориелло К.А. Гуморальный и клеточный иммунный ответ на Microsporum canis при природном дерматофитозе кошек.
J Med Vet Mycol . 1993;31(2):121–132.

3.ДеТар Л.Г., Дубровский В., Скарлетт Дж.М. Описательная эпидемиология и тестовые характеристики кошек с диагнозом дерматофитии Microsporum canis в приюте для животных на северо-западе США. J Feline Med Surg . 2019;21(12):1198–1205.

4. Moriello KA, Stuntebeck R, Mullen L. Инфекция Trichophyton и Microsporum gypseum и перенос фомита у кошек из трех приютов для животных: серия ретроспективных случаев. J Feline Med Surg .2020;22(4):391–394.

5. Cornegliani L, Persico P, Colombo S. Узловатая дерматофития собак (керион): 23 случая. Вет Дерматол . 2009;20(3):185–190.

6. Моретти А., Агнетти Ф., Манчианти Ф. и соавт. Дерматофитии животных: эпидемиологические, клинические и зоонозные аспекты. G Ital Dermatol Venereol. 2013; 148:563–572.

7 Ди Маттиа Д., Фондати А., Монако М. и др. Сравнение двух методов инокуляции культуры Microsporum canis с использованием техники отбора проб зубной щеткой. Вет Дерматол . 2019;30(1):60–e17.

8. Мориелло К.А., Лойтенеггер СМ. Использование коммерческого анализа количественной ПЦР у 52 кошек из приютов с высоким риском для выявления дерматофитии и микологического лечения. Вет Дерматол. 2018;29(1):66–e26.

9. Cafarchia C, Gasser RB, Figueredo LA, et al. Усовершенствованный метод молекулярной диагностики дерматофитии собак и кошек. Мед Микол. 2013;51(2):136–143.

10. Пири Ф., Махмудабади А.З., Ронах А. и соавт.Оценка пандерматофитной гнездовой ПЦР по сравнению с обычными методами прямого обнаружения и идентификации возбудителей дерматофитии у животных. Микозы. 2018;61(11):837–844.

11. Фрост К., Шик А., Маунт Б. Ретроспективный анализ соответствия внутренней культуры дерматофитов и коммерческой количественной ПЦР в 16 специализированных дерматологических клиниках США, 2018–2019 гг. Резюме представлено на виртуальном Североамериканском форуме ветеринарной дерматологии; 2021 21–24 апреля.

12. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др. Лечение приютских кошек пероральным приемом тербинафина и одновременным полосканием известково-серным раствором. Вет Дерматол . 2013;24(6):618–620.

13. Ньюбери С., Мориелло К., Вербрюгге М., Томас С. Использование известково-серной серы и итраконазола для лечения кошек из приюта, естественно зараженных Microsporum canis , в дополнительном учреждении: испытание в открытом поле. Вет Дерматол . 2007;18(5):324–331.

14. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др.Лечение приютских кошек пероральным приемом тербинафина и одновременным полосканием известково-серным раствором. Вет Дерматол. 2013;24(6):618–620.

15. Мориелло К.А. In vitro эффективность шампуней, содержащих миконазол, кетоконазол, климбазол или ускоренную перекись водорода, против видов Microsporum canis и Trichophyton . J Feline Med Surg . 2017;19(4):370–374.

16. Мориелло К.А. Немедленная и остаточная противогрибковая активность соединений, используемых для лечения всего тела и адъювантной местной терапии против Microsporum canis : исследование in vitro. Вет Дерматол. 2020;31(4):272–e64.

17. DeBoer DJ, Moriello KA. Неспособность двух местных препаратов повлиять на течение экспериментально индуцированной дерматофитии у кошек. ЯВМА . 1995;207(1):52–57.

18. Хнилица К.А., Медло Л. Оценка местного применения энилконазола для лечения дерматофитии в персидском питомнике. Вет Дерматол . 2002;13(1):23–28.

19. Мориелло К.А. Лечение дерматофитии у собак и кошек: обзор опубликованных исследований. Вет Дерматол . 2004;15(2):99–107.

20. Hyo-Seung N, Tae-Young K, Suk-Hee H, Changbaig H. Оценка терапевтической эффективности лечебного шампуня, содержащего гидрохлорид тербинафина и хлоргексидин, у собак с дерматофитиями, осложненными бактериальной инфекцией. Дж Биомед Рез . 2013;14(3):154–159.

21. Liang C, Shan Q, Zhong J, et al. Фармакокинетика и биодоступность перорального раствора итраконазола у кошек.
J Feline Med Surg .2016;18(4):310–314.

22. Puls C, Johnson A, Young K, et al. Эффективность перорального раствора итраконазола с чередующейся недельной пульс-терапией для лечения кошек с экспериментальной инфекцией Microsporum canis . J Feline Med Surg . 2018;20(10):869–874.

23. Colombo S, Cornegliani L, Vercelli A. Эффективность итраконазола в качестве комбинированной непрерывной/пульс-терапии при дерматофитии кошек: предварительные результаты в девяти случаях. Вет Дерматол. 2001;12(6):347–350.

24. Mawby DI, Whittemore JC, Fowler LE, Papich MG. Сравнение характеристик абсорбции пероральных эталонных препаратов и составов итраконазола у здоровых кошек. ЯВМА. 2018;252(2):195–200.

25. Реншлер Дж., Альберс А., Синклер-Маклинг Х., Уит Л.Дж. Сравнение компаундированного, генерического и инновационного итраконазола у собак и кошек. ДЖААХА. 2018;54(4):195–200.

26. Николс П.Р., Моррис Д.О., Бил К.М. Ретроспективное исследование кожного васкулита у собак и кошек. Вет Дерматол . 2001;12(5):255–264.

27. Foust AL, Marsella R, Akucewich LH, et al. Оценка персистенции тербинафина в шерсти здоровых кошек после 14 дней ежедневной терапии. Вет Дерматол . 2007;18(4):246–251.

28. Котник Т., Козух Эрзен Н., Кузнер Дж., Дробник-Косорок М. Лечение гидрохлоридом тербинафина Microsporum canis экспериментально индуцированного стригущего лишая у кошек. Вет микробиол. 2001;83(2):161–168.

29.Медло Л., Чалмерс С.А. Кетоконазол для лечения дерматофитии у кошек. ЯВМА . 1992; 200(1):77–8.

30. Бегум Дж., Кумар Р. Распространенность дерматофитоза у животных и тестирование чувствительности к противогрибковым препаратам изолированных видов Trichophyton и Microsporum . Trop Anim Health Prod . 2020;53(1):3.

31. ДеБоер Д.Дж., Мориелло К.А., Блюм Дж.Л., Фольк Л.М. Влияние лечения люфенуроном у кошек на возникновение и течение инфекции Microsporum canis после контакта с инфицированными кошками. ЯВМА. 2003;222(9):1216–1220.

32. Moriello KA, Deboer DJ, Schenker R, et al. Эффективность предварительной обработки луфенуроном для предотвращения инфекции Microsporum canis в модели прямого местного заражения кошек. Вет Дерматол. 2004;15(6):357–362.

33. DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JL, et al. Безопасность и иммунологические эффекты после введения инактивированной и комбинированной живой инактивированной вакцины против дерматофитии у кошек. Am J Vet Res. 2002;63(11):1532–1537.

34. Ньюбери С., Мориелло К., Койнер К. и соавт. Ведение эндемической дерматофитии Microsporum canis в приюте с открытым приемом: полевое исследование. J Feline Med Surg. 2015;17(4):342–347.

35. Мориелло К.А., Кундер Д., Хондзо Х. Эффективность восьми коммерческих дезинфицирующих средств против Microsporum canis и Trichophyton spp. инфекционные споры на экспериментально зараженной текстильной поверхности . Вет Дерматол . 2013;24(6):621–623, e151–152.

36. Мориелло К.А. Механическая мойка мисок для корма для домашних животных эффективна для обеззараживания Microsporum canis . Вет Дерматол . 2019;30(5):428–e130.

37. Мориелло К.А. Дезактивация 70 домов приемных семей, подвергшихся воздействию инфицированных Microsporum canis кошек: ретроспективное исследование. Вет Дерматол. 2019;30(2):178–e55.

38. Мориелло К.А. Дезинфицирующие средства для питомников Microsporum canis и Trichophyton sp. Вет Мед Инт .
2015;2015:853–937.

39. Sattasathuchana P, Bumrungpun C, Thengchaisri N. Сравнение субклинической инфекции дерматофитов у короткошерстных и длинношерстных кошек. Ветеринарный мир . 2020;13(12):2798–2805.

40. Мориелло К. Кошачий дерматофитоз: аспекты, относящиеся к лечению заболевания у одной и нескольких кошек. J Feline Med Surg . 2014;16(5):419–431.

Культура и идентификация грибов | Зоэтис CA

  • У каждого пациента с подозрением на грибковую инфекцию
  • Белые пушистые колонии с желтоватым обратным пигментом
  • Толстостенные, веретенообразные макроконидии с бугорками на концах и обычно более чем с шестью внутренними отделениями
  • Зернистые, бежевые культуры с желтоватым обратным пигментом
  • Обильные тонкостенные макроконидии с шестью или менее внутренними отделениями
  • Белые порошкообразные колонии с
  • Очень мало сигарообразных макроконидий и большое количество мелких круглых микроконидий

Собака с локализованной дерматофитией (керионом) (любезно предоставлено Стефани Петерс)

Прозрачная ацетатная лента поверх капли пятна после сбора спор грибка

Ложноположительный результат DTM: колонии сапрофитов (любезно предоставлено Стефани Питерс)

Положительный DTM: Microsporum canis (любезно предоставлено Тимом Наттоллом)

Microsporum canis macroconidia (любезно предоставлено Тимом Наттоллом)

Положительный результат DTM: Microsporum gypseum (любезно предоставлено Francesco Albanese)

Microsporum gypseum macroconidia (любезно предоставлено Francesco Albanese)

Положительный DTM: Trichophyton mentagrophytes (любезно предоставлено Francesco Albanese)

Trichophyton mentagrophytes macroconidia and microconidia (любезно предоставлено Тимом Наттоллом)

  • Тестовая среда для дерматофитов (DTM), прозрачная клейкая лента, предметные стекла, микроскоп, метиленовый синий или DiffQuick ® синий
  • Используйте скальпель с водой для соскабливания и кровоостанавливающие средства для выщипывания; взять волоски и чешуйки с края поражения (желательно флуоресцирующие в свете Вуда)
  • Аккуратно отпечатайте волоски и масштабируйте на ЦММ; не завинчивайте крышку
  • Инкубировать агар при 20-25°C (лучше в теплом помещении с влагой)
  • Проверяйте агар ежедневно в течение 3 недель
  • Изменение цвета (изменение pH), которое происходит, когда колония еще мала, а затем распространяется по мере роста колонии, свидетельствует о дерматофитах
  • Когда колонии исполнится 10–14 дней, аккуратно прижмите прозрачную липкую ленту (липкой стороной вниз) к подозрительным колониям и положите ее на каплю метиленового синего или другого красителя на предметном стекле.
  • Оцените образец под микроскопом с конденсором вверх. Клейкая лента действует как собственное покровное стекло.
  • Если у пациента нет четко очерченного поражения или есть подозрение на бессимптомное носительство, используйте технику зубной щетки McKenzie.
  • Расчесывайте волосы новой зубной щеткой около 5 минут
  • Аккуратно поместите волоски и чешую стерильной иглой на агар или обрежьте щетинки стерильными ножницами
  • Поместите весь материал (щетинки, волоски, чешую) на агар
  • Изменения цвета агара также могут происходить с колониями сапрофитов, особенно по мере их старения.Ежедневный осмотр культуры обязателен, чтобы заметить изменение цвета, которое сопровождает растущую культуру.

Отдельный отек, содержащий гнойный материал, обычно в подкожной клетчатке

Перианальный абсцесс у собаки

Отсутствие волос на участках, где они обычно присутствуют; может быть связано с фолликулитом, аномальным циклом фолликулов или самотравмой

Обширная алопеция, вторичная по отношению к кожной эпителиотропной лимфоме

хорошо очерченная, циркулярная, пятнистая или сливающаяся алопеция, часто связанная с фолликулитом

Алопеция «поеденная молью», вторичная по отношению к поверхностному бактериальному фолликулиту

Регионарный подкожный отек

Ангионевротический отек вследствие кожной сыпи лекарственного средства

Кольцевидное расположение поражений

Кольцевидные поражения у собаки с мультиформной эритемой

Истончение кожи или других тканей

Атрофия кожи, вызванная глюкокортикоидами

Заполненное жидкостью возвышение эпидермиса >1 см

Буллы у собаки с буллезным пемфигоидом

Наполненное кровью возвышение эпидермиса более 1 см

Межпальцевая геморрагическая булла у собаки с глубокой пиодермией и фурункулезом

расширенный волосяной фолликул, наполненный кератином, кожным салом

Комедоны на брюшной полости у собаки с гиперкортицизмом

Засохший экссудат и ороговевшие остатки на поверхности кожи

Многоочаговые корки, вызванные листовидной пузырчаткой

Узел, выстланный эпителием и содержащий жидкость или твердый материал.

Киста эпидермального включения

Обширная потеря пигмента

Депигментация носового платка у собак с витилиго.

Заплаты из-за кровоизлияния >1 см

Экхимозы лап у собак вследствие васкулита

Круглые чешуйки или корочки с эритемой, ассоциированные с фолликулитом или разорвавшимися пустулами или везикулами

Эпидермальные воротнички у собаки со стафилококковым поверхностным бактериальным фолликулитом

Дефект эпидермиса, не проникающий через базальную мембрану. Для дифференциации от язвы может потребоваться гистопатология.

Эрозии у собаки с васкулитом

Покраснение кожи из-за воспаления, закупорка капилляров

Эритема у собаки с кожной лекарственной сыпью

Толстая корка, часто связанная с некрозом, травмой или термическим/химическим ожогом

Эшар от физической травмы

Эрозии и/или изъязвления вследствие самотравмирования

Ссадины у кошки с атопическим дерматитом

Избыточный роговой слой, подтвержденный гистопатологией. Этот термин часто используется для описания носового зеркала и подушечек лап.

Трещины подушечек лап у собаки с поверхностным некролитическим дерматитом

Язва на поверхности кожи, которая начинается и граничит с ходами, распространяющимися в более глубокие, обычно подкожные ткани

Перианальные свищи у собак

Скопление чешуи на стержне волоса

Фолликулярные слепки вокруг шерсти собаки с гипотиреозом

Избыточный роговой слой, подтвержденный гистопатологией.Этот термин часто используется для описания носового зеркала и подушечек лап.

Идиопатический гиперкератоз зеркала носа (слева) и подушечек стоп (справа)

Повышенное содержание меланина в коже, часто вторичное по отношению к воспалению

Воспалительные поражения (слева), приводящие к поствоспалительной гиперпигментации (справа)

Частичная потеря пигмента

Идиопатическая гипопигментация носового платка

Отсутствие волос вследствие генетических факторов или дефектов эмбриогенеза.

Врожденный гипотрихоз у щенков шоколадного лабрадора.

Отсутствие кожного пигмента

Макулярная лейкодерма у собак

Потеря пигмента волос

Прогрессирующая лейкотрихия у больного витилиго.

Утолщение эпидермиса, часто из-за хронического воспаления, приводящее к чрезмерной текстуре

Лихенификация кожи у собаки с хроническим атопическим дерматитом и малассезиозным дерматитом

Плоское поражение, связанное с изменением цвета

Пигментное пятно (слева) Эритематозное пятно (справа)

Повышенное содержание меланина в коже может быть вторичным по отношению к воспалению.

Поствоспалительная гиперпигментация бедра этой собаки

Многоочаговый, папулезный, корковый дерматит; описательный термин, а не диагноз

Милиарный дерматит у кошки с аллергией на блох

Эритематозная, пятнистая, папулезная сыпь; эритематозные пятна обычно имеют диаметр 2-10 мм и сливаются, образуя более крупные поражения в некоторых областях

Кореподобные высыпания у собак с кожной реакцией на лекарства

Твердое возвышение >1 см

Узелки на носу у собаки с кожным гистиоцитозом.

Аномальная морфология ногтей вследствие инфекции, воспаления или травмы ногтевого ложа; могут включать: Онихогрифоз, Онихомадез, Онихорексис, Онихошизия

Ониходистрофия у собак с хронической аллергией

Аномальное искривление когтей; вторичный по отношению к воспалению или травме ногтевого ложа

Онихогрифоз у собаки с симметричной волчаночной ониходистрофией

Отслоение когтей вследствие воспаления или травмы ногтевого ложа

Онихомадез у собаки с симметричной волчаночной ониходистрофией

Фрагментация когтя вследствие воспаления или травмы ногтевого ложа

Онихорексис у собаки с симметричной волчаночной ониходистрофией

Расщепление когтей вследствие воспаления или травмы ногтевого ложа

Онихошизия у собаки с симметричной волчаночной ониходистрофией

Твердое образование на коже ≤1 см

Папулы у собаки с поверхностным бактериальным фолликулитом

Твердое образование на коже ≤1 см

Папулы у собаки с поверхностным бактериальным фолликулитом

Воспаление ногтевого валика

Паронихия у собаки с симметричной волчаночной ониходистрофией

Плоское поражение, связанное с изменением цвета >1 см

Гипопигментированное пятно (слева), эритематозное пятно (справа)

Небольшие эритематозные или фиолетовые поражения из-за кожного кровотечения

Петехии у собаки с кожным васкулитом

Расширение вен; чаще всего ассоциируется с гиперкортицизмом

Флебэктазия и кожная атрофия вследствие гиперкортицизма у собаки

Плосковершинное возвышение >1 см, образованное сливающимися папулами или кожной инфильтрацией

Бляшки у кошки с кожной лимфомой

Выступающая эпидермальная инфильтрация гноя

Пустулы на животе у собаки с поверхностной стафилококковой пиодермией.

Сетчатое расположение очагов поражения

Сетчатая лейкотрихия на спине лошади

Скопление рыхлых фрагментов рогового слоя

Рыхлая крупная чешуя из-за ихтиоза у золотистого ретривера

Фиброзная ткань, замещающая поврежденные кожные и/или подкожные ткани

Рубцы (справа) после заживления язвы (слева) у собаки со стерильным нодулярным дерматитом

Волнообразное, змеевидное расположение поражений

Серпигинозная крапивница у лошади

Необратимое расширение сосудов, приводящее к поражению красного или фиолетового цвета (редко)

Телеангиэктазии у собаки с ангиоматозом

Дефект эпидермиса, проникающий в базальную мембрану. Для дифференциации от эрозии может потребоваться гистопатология.

Изъязвления кожи у собаки с васкулитом.

Волдыри (крутостенные ограниченные возвышения на коже из-за отека) из-за реакции гиперчувствительности

Крапивница у лошади

Заполненное жидкостью возвышение эпидермиса,

Везикулы и буллы на ушной раковине, вызванные буллезным пемфигоидом

Крутостенное ограниченное возвышение кожи из-за отека

Волдыри, связанные с внутрикожным тестом на аллергию у лошади

Trichophyton Mentagrophytes – обзор

B Trichophyton

Trichophyton mentagrophytes, распространенный во всем мире зоофильный гетероталлический гриб, имеет ограниченную видовую специфичность и является основной причиной стригущего лишая у мышей. Arthroderma benhamiae, независимый вид в старой литературе, является идеальным состоянием T. mentagrophytes . На основе успешных скрещиваний с A. benhamiae, T . ( Achorion ) quinckeamum в настоящее время считается либо разновидностью, либо синонимом T. mentagrophytes (Ajello et al., 1968; Weitzman and Padhye, 1976). Широкое разнообразие видов Trichophyton, Microsporum, и Achorion из более старой литературы теперь считается синонимом T.ментагрофиты .

Классический человеческий фавус относится к T. schoenleini, с самой высокой заболеваемостью в южной Европе и северной Африке, где он представляет собой серьезную проблему для общественного здравоохранения. Ранние сообщения в области медицинской микологии указывали на то, что наблюдаемые поражения «фавикового типа» у мышей были вызваны T. schoenleini . Однако большинство из них были основаны на клинических наблюдениях, и только два таких сообщения (DuBois, 1929) и одно сообщение Unna и Franck (цит. по Patiala, 1951) были подтверждены Sabouraud. Trichophyton schoenleini также был обнаружен у кошки Lebert (Richou, 1950) и у собаки Catanei (1936).

Из 14 видов Trichophyton , экспериментально привитых мышам, только три оказались патогенными: T.mentagrophytes, T.mentagrophytes var. quinckeanum, и T. violaceum (Rieth, 1968).

В 1956 г. в нижнем течении долины Св. Лаврентия было проведено несколько полевых исследований мышиного фавуса (Blank, 1957).Прямое исследование шерсти диких мышей с кожными поражениями не выявило инфекции; однако культура поражений привела к выделению T. mentagrophytes var. quinckaenum ( Microsporum quinckeanum, по таксономии Бланка) или отсутствие роста. Два полевых исследования продемонстрировали участие членов семьи и домашних животных с ферм, где мыши были переносчиками грибка. Был сделан вывод, что мыши представляют собой резервуар грибка для кошек и собак, который служил для передачи T. mentagrophytes человеку.

Пятьдесят процентов из 2500 племенных мышей были инфицированы T. mentagrophytes в Англии (Parish and Craddock, 1931). Обследование 222 бессимптомных мышей в возрасте от 4 до 6 недель от четырех коммерческих заводчиков в США, проведенное Dolan et al . (1958) выявили заболеваемость T. mentagrophytes у 55, 9, 0 и 66% животных. Mackenzie (1961) исследовал более 800 зоомагазинных и лабораторных мышей на T. mentagrophytes .Среди лабораторных животных наблюдалась высокая заболеваемость грибком (49 из 160 из боксов для разведения и 104 и 149 из клеток для поголовья), в то время как поражения наблюдались только у 2 из 104 положительных носителей. Двенадцать из 20 мышей из зоомагазина были инфицированы. Особый интерес представляло отсутствие признаков у многих мышей. Используя метод зубной щетки для сбора спор, Rieth (1968) обнаружил, что 4,3% из 4000 внешне здоровых лабораторных мышей заражены T. mentagrophytes . Другие сообщали о естественном заражении мышей T.mentagrophytes (DuBois, 1929; Catanei, 1942). Многие авторы подчеркивают значение состояния неаппарентного носительства.

Booth (1952) культивировал T. mentagrophytes от 12 мышей без поражений и продемонстрировал, что мыши, которые казались здоровыми, могут быть инфицированы грибком. Долан и др. . (1958) культивировали T. mentagrophytes от 43% здоровых домашних мышей. Из них только 2% мышей имели поражения. Точно так же Menges и др. . (1957) сообщили об обнаружении грибка у «здоровых» диких мышей Джорджии в США.О других выделениях дерматофитов сообщалось в США, Египте и Новой Зеландии (McKeever et al., 1958; Taylor et al., 1964; J. M. B. Smith and M. J. Marples, 1965, неопубликованные наблюдения).

Davies and Shewell (1964, 1965) обнаружили уровень инфицирования более 90% в колонии, в которой менее 1% мышей BALB/c и C3H/Bi имели клинические признаки. Частота носительства увеличивалась с возрастом, и 100% животных старше 6 месяцев были положительными. Половых различий в частоте носительства отмечено не было.Волосяные покровы долго выживших после облучения всего тела имели более высокое количество грибков, чем необработанные мыши. У мышей C3H появились залысины, обычно на спине и животе, но культура соскобов с кожи хвоста была отрицательной. У мышей BALB/c на хвосте появились выпуклые коричневые круглые струпья, из которых было выделено Т. mentagrophytes . LaTouche (1957) считал грибковое носительство на хвосте важным фактором в поддержании инфекции колонии. В нескольких случаях считалось, что мышиные вши являются возможным средством передачи T.mentagrophytes среди мышей (Booth, 1952; Rieth, 1968).

Цетин и др. . (1965) описали эпизоотию T. mentagrophytes (interdigital) в колонии из 400 белых мышей, из которых 20—25 погибли за 2 дня. У некоторых были признаки генерализованной инфекции, характеризующиеся редкими волосами, малоподвижностью и анорексией. Также были описаны носовое кровотечение непосредственно перед смертью, бляшки диаметром 4-10 мм на лице, щеках и носу, которые были круглыми и кратерообразными, с заметной периферией, спаянной с подлежащей тканью, покрытой толстой желтоватой коркой и меловидным видом на коже. поверхность.Второй тип бляшек диаметром 4-6 мм поражал спину, спину и живот. Последние представляли собой круглые, беловато-розовые, очерченные участки облысения. Аналогичные поражения были получены экспериментально у мышей. Кожа животных с общей алопецией была сухой и синюшной, шерсть ломкой. Согласно Цетину и др. . (1965), «Хвост у некоторых животных отрезался самопроизвольно, тогда как у некоторых хвост легко отрезался при легком надавливании» (с. 840). Ретроспективно невозможно оценить влияние других интеркуррентных, естественно возникающих заболеваний, т.е.e., Corynebacterium spp. инфекции вируса эктромелии.

Trichophyton terrestre повсеместно распространен в почве и относительно непатогенен. Он был выделен из волосяного покрова грызунов (не лабораторных мышей) без дерматологических заболеваний (Emmons et al., , 1977). Сообщалось, что иногда он бывает патогенным для человека (Grimmer, 1974; Heidenbluth et al., 1978), собак и кошек (Scott et al., 1980), крупного рогатого скота (Gupta et al., 1970) и экспериментально на морских свинках (Heidenbluth et al., 1978). Блох (1911) выделил Trichophyton sp. неопределенной идентификации от мыши с кожными поражениями.

Trichophyton Verrucosum – обзор

Кошачьи и собачьи блохи могут заражать кроликов. Распространение собачьих или кошачьих блох отличается от распределения кроличьих блох, которые обычно встречаются на голове, особенно на ушах и вокруг глаз. Кошачьи и собачьи блохи обычно находятся на спине.

Инвазия блохами может вызывать сильный зуд. Имидаклоприд можно использовать для уничтожения блох.

Как Cheyletiella parasitovorax , так и Leporacarus gibbus (ранее Listrophorus gibbus ) можно обнаружить в шерсти бессимптомных кроликов. Эти клещи могут быть комменсалами.

Основные трудности ухода позволяют C . parasitovorax размножаться и вызывать заболевания.Как правило, большие участки белой чешуи располагаются вдоль спины, особенно между лопатками и у основания хвоста.

Cheyletiella parasitovorax питается кератином. Физическое удаление мертвой кожи и волос с шерсти с помощью расчески может помочь уменьшить количество паразитов.

Лечение основной причины, такой как ожирение, плохой уход за собой или заболевания зубов, так же важно, как и лечение клещей.

Инсектицидная обработка селамактином или ивермектином эффективна для уничтожения клещей. Фипронил также эффективен, но производители не пропагандируют его использование у кроликов из-за побочных реакций со смертельным исходом. Имидаклоприд неэффективен.

Cheyletiella parasitovorax является зоонозом и может вызывать легкие зудящие поражения у людей.

Меховой клещ кролика L . gibbus обычно протекает бессимптомно, хотя сообщалось о реакциях гиперчувствительности.

Demodex cuniculi был обнаружен у бессимптомных домашних кроликов.

Может возникнуть саркоптоз, хотя он редко встречается у домашних кроликов.

Сосущую вошь Haemodipsus ventricosus иногда можно обнаружить у домашних кроликов. Обычно встречается у кроликов на фермах, содержащихся в интенсивных условиях.

Инфекция дерматофитов, обычно Trichophyton mentagrophytes и Microsporum canis , может поражать кроликов, вызывая круглые, покрытые коркой, эритематозные, облысевшие области, которые сопровождаются зудом. Поражения обычно находятся на ушах и лице. Лечение аналогично другим видам.

Выявление дерматофитов у здоровых домашних собак и кошек в восточной Индии

Иран J Vet Res. 2016 Зима; 17(1): 20–24.

С.Debnath

1 Департамент ветеринарного здравоохранения, Факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K.B. Сарани, Белгачия, Калькутта-700 037, Западная Бенгалия, Индия;

T. Mitra

1 Департамент ветеринарного здравоохранения, Факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K.B. Сарани, Белгачия, Калькутта-700 037, Западная Бенгалия, Индия;

А.Kumar

2 Отдел ветеринарного здравоохранения, Индийский институт ветеринарных исследований (IVRI), Изатнагар, Барейли, Уттар-Прадеш-243 122, Индия;

I. Samanta

3 Кафедра ветеринарной микробиологии, Факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K.B. Sarani, Belgachia, Kolkata-700 037, Западная Бенгалия, Индия

1 Департамент ветеринарного здравоохранения, факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K. Б. Сарани, Белгачия, Калькутта-700 037, Западная Бенгалия, Индия;

2 Отдел ветеринарного здравоохранения, Индийский институт ветеринарных исследований (IVRI), Изатнагар, Барейли, Уттар-Прадеш-243 122, Индия;

3 Кафедра ветеринарной микробиологии, Факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K.B. Сарани, Белгачия, Калькутта-700 037, Западная Бенгалия, Индия

* Адрес для корреспонденции: И.Саманта, кафедра ветеринарной микробиологии, факультет ветеринарии и зоотехники, Западно-Бенгальский университет зоотехники и рыболовства (WBUAFS), 37, K.B. Сарани, Белгачия, Калькутта-700 037, Западная Бенгалия, Индия. Электронная почта: [email protected]

Поступила в редакцию 7 июня 2015 г.; Пересмотрено 11 ноября 2015 г.; Принято 14 декабря 2015 г.

Эта статья была процитирована другими статьями в PMC.

Abstract

В последнее время наблюдается рост заболеваемости дерматофитиями, особенно среди школьников в восточной Индии, наряду с возросшей тенденцией содержания домашних животных, таких как собаки и кошки. Это исследование было предпринято для выявления дерматофитов, чувствительных к противогрибковым препаратам, среди животных-компаньонов. В общей сложности 1501 здоровое животное-компаньон, в том числе 1209 собак и 292 кошки, принадлежащие отдельным владельцам в Калькутте и ее окрестностях (Западная Бенгалия, Индия), были обследованы на наличие признаков дерматофитии в течение 2011-2013 гг. Собранные образцы подвергали непосредственному исследованию с помощью стандартной методики КОН-маунтов. Образцы инокулировали как на декстрозный агар Сабуро (SDA), так и на 0.05% хлорамфеникола и 0,5% циклогексимида и тестовая среда для дерматофитов (DTM). Каждый изолят гриба был идентифицирован на основании характеристик его колонии и продуцируемых им клеток гиф и конидиалов. Чувствительность изолятов к противогрибковым препаратам тестировали с помощью анализа микроразведений в бульоне с использованием противогрибковых препаратов флуконазола, кетоконазола, итраконазола, миконазола, гризеофульвина и амфотерицина-В. Среди 1209 проб от собак и 292 проб от кошек 253 (20,93%) и 109 (37,33%) проб оказались положительными на дерматофиты при прямом исследовании.Тремя идентифицированными видами дерматофитов с преобладающим распространением были Microsporum canis , Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes . Кетоконазол (0,06–0,5 мкг/мл), итраконазол (0,03–0,5 мкг/мл) и амфотерицин-В (0,03–0,5 мкг/мл) показали самые низкие значения МПК по сравнению с M. canis , T. mentagrophytes и M. гипс соответственно. Это первый системный отчет о дерматофитах у здоровых домашних животных с большим количеством образцов в Индии.

Ключевые слова: Кошка, дерматофиты, собака, Микроспорум , Trichophyton

Введение

Дерматофитоз представляет собой поверхностную грибковую инфекцию волос и кератинизированных слоев эпидермиса и вызвано кератинофильным и кератинолитическим родом, такими как Microsporum , Trichophyton и Epidermophyton . Это эндемичная инфекция во многих странах мира, поражающая домашних животных (собак, кошек), домашних животных (телят) и лабораторных животных (кроликов), а также людей.Высокая плотность животных на ферме и тесный контакт между животными-компаньонами и человеком способствуют передаче инфекции (Lund et al., 2014 ▶; Samanta, 2015 ▶).

Домашние животные (собаки и кошки) могут быть переносчиками спор дерматофитов ( Microsporum ), которые не могут проникнуть в здоровую кожу животных. Эта стадия носительства может прогрессировать до инфекции из-за определенных предрасполагающих факторов, таких как молодой возраст, иммуносупрессия, дефицит питания, высокая температура окружающей среды с высокой влажностью и травма кожи.После проникновения через поврежденную кожу споры прорастают в роговой слой, а метаболиты грибов вызывают воспалительную реакцию в месте заражения (Weitzman and Summerbell, 1995 ▶).

Диагностические методы «золотого стандарта» для выявления дерматофитии включают прямое микроскопическое исследование клинических образцов с последующим выделением и идентификацией in vitro (Nardoni et al. , 2010 ▶). Противогрибковые препараты, обычно используемые для системного лечения дерматофитии у собак и кошек, включают итраконазол, тербинафин и гризеофульвин (Gupta and Del Rosso, 2000 ▶).В настоящее время появление устойчивых к противогрибковым препаратам клинических изолятов приводит к неэффективности лечения микозов (Alcazar-Fuoli and Mellado, 2014 ▶). Таким образом, тест in vitro на противогрибковую чувствительность может помочь оптимизировать терапию и выбрать эффективный противогрибковый препарат против клинических изолятов (Araújo et al., 2009 ▶).

Индийское население чаще всего страдает от дерматофитии дерматофитии дерматофитии , которая связана с возрастом, профессией, предыдущим контактом и личной гигиеной (Mahapatra, 1989 ▶; Das et al., 2009 ▶). Тем не менее, в последнее время было зарегистрировано увеличение частоты дерматомикоза головы (инфекция кожи головы), особенно среди школьников в районе исследования (Западная Бенгалия, Индия), что не было связано с личной гигиеной (Kundu et al. , 2012 ▶). В районе исследования наблюдалась повышенная тенденция содержания домашних животных, таких как собаки и кошки, и домашние животные очень тесно связаны с повседневной жизнью их владельцев, особенно детей. Исторически было отмечено очень мало сообщений о появлении дерматофитов у домашних животных в районе исследования (Chakrabarty et al., 1954 ▶; Чаттерджи и др., 1980 ▶). Кроме того, исследования проводились с ограниченным числом образцов, что не могло обеспечить текущую тенденцию инфицирования и их противогрибковую чувствительность.

Таким образом, в настоящем исследовании сообщается о возникновении состояния носительства дерматофитов и их чувствительности к противогрибковым препаратам у здоровых домашних животных (собак и кошек), которые считаются наиболее сильными переносчиками в Индии.

Материалы и методы

Исследуемая популяция

В общей сложности 1501 животное-компаньон, в том числе 1209 собак и 292 кошки, принадлежащие отдельным владельцам в Калькутте и ее окрестностях (Западная Бенгалия, Индия), были обследованы на наличие признаков дерматофитии в течение 2011-2013 гг. Кожу животных осматривал ветеринар на наличие повреждений и отбирал только здоровых животных без поражений. Животные были как самцами, так и самками. Собаки принадлежали к разным породам (немецкая овчарка, шпиц, лабрадор, золотистый ретривер), а кошки были аборигенными. По возрасту животные были разделены на две группы: 1-я группа (0-6 мес) и 2-я группа (> 6 мес). Пробы отбирали в течение четырех сезонов: весны (март-май), лета (июнь-август), осени (сентябрь-ноябрь) и зимы (декабрь-февраль).Собаки содержались в помещении и часто делили общий пол, кровать, диван со своими хозяевами, в частности с детьми. Однако кошки предпочитали бродить вне дома в дневное время и выглядели грязными.

Отбор проб

Отбор проб проводился либо в ветеринарных клиниках для домашних животных, либо на дому у владельца. Собирали шерсть и неиспользованную зубную щетку или щетку для волос после расчесывания кожи животного со спины, плеч, боков, задних конечностей и ног в течение 5-7 мин. И волосы, и кисточки были завернуты в цветную бумагу и хранились в герметичном контейнере, желательно без влаги, для транспортировки в лабораторию.

Прямой осмотр

Собранные образцы были подвергнуты прямому исследованию с использованием стандартной методики КОН (Rippons, 1983 ▶).

Изоляция и идентификация

Клинические образцы инокулировали как на декстрозный агар Сабуро (SDA) с 0,05% хлорамфениколом, так и на 0,05% хлорамфеникола.5% циклогексимида и тест-среда на дерматофиты (DTM). Планшеты с SDA инкубировали при 28°C в течение четырех недель и периодически наблюдали за появлением грибкового роста. Пробирки с DTM инкубировали при 28°C в течение трех недель, чтобы обнаружить любое изменение цвета (Robert and Pihet, 2008 ▶).

Каждый изолят гриба был идентифицирован на основании характеристик его колонии и продуцируемых им гиф и конидиальных клеток. Конидии идентифицировали после окрашивания лактофенолом хлопкового синего на основании их размера, формы, наличия перегородок, толщины конидиальной стенки и расположения конидиальных клеток вокруг гиф (Pang et al. , 2008 ▶).

Тест на чувствительность к противогрибковым препаратам

Чувствительность изолятов к противогрибковым препаратам тестировали с помощью анализа микроразведений в бульоне с использованием флуконазола, кетоконазола, итраконазола, миконазола, гризеофульвина и противогрибковых препаратов амфотерицина-В (CLSI, 2002 ▶).

Статистический анализ

Различия в частоте возникновения дерматофитии сравнивали в зависимости от возраста, пола и времени года с использованием критерия Хи-квадрат (SPSS Inc., Чикаго, Иллинойс).

Результаты

Возникновение дерматофитов у кошек и собак

Из 1209 проб от собак 253 (20.93%) образцов оказались положительными на споры дерматофитов при прямом исследовании. Из 253 проб дерамтофиты выделены из 248 (248/253, 98,02 %). Три идентифицированных вида дерматофитов: M. canis (43,55%), M. gypseum (36,69%) и T. mentagrophytes (19,79%) (-; ). У более молодых щенков (<6 месяцев) наблюдались статистически более значимые (P<0,0001) уровни возникновения заболевания, чем у взрослых (>6 месяцев). Летом и осенью наблюдалась более высокая частота носительства у собак, чем зимой и весной (P=0.0091; ). У самцов животных наблюдалось относительно более высокое появление дерматофитов, чем у самок, однако это не было статистически значимым (P = 0,571; ).

Макроконидии M. canis (лактофеноловый хлопковый синий), обнаруженные у здоровых собак в Индии

Микроконидии T. mentagrophytes (лактофеноловый хлопковый синий), обнаруженные у здоровых собак в Индии

Таблица 1

Occ У собаки и кошек на Западном Бенгалии, Индия

Dermatophytes Собаки

N процент N процент
М. Канис 108 43,55 57 55,34
М. гипс 91 36,69 32 31,07
Т. mentagrophytes 49 49 19.76 14 13.59
10000 103 10000

Таблица 2

Переменные возраста, секс и сезон на собаке и кошачьего дерматофитоза в Западной Бенгалии, Индия

Переменные №положительных/нет. обследованных животных (в процентах)
Собака Кошка
Возраст
0-6
0-6 172/484 (35.54) 68/178 (38.20)
> 6 76/725 (10.48) 35/114 (30.70)
Р<0,0001 Р=0,2106
Секс
Мужской 133/629 (21. 14) 47/127 (37.00)
женщины 115/580 (19.83) 56/165 (33.93)
p = 0.571 p = 0.5864
Сезон
весна
14/119 (11.76) 09/53 (16.98)
лето 103/454 (22.69) 43/94 45.74)
Осень 117 / 528 (22. 16) 38/87 (43.68)
зима 14/108 (12.96) 13/58 (22.41)
p = 0,0091 p = 0,0039

среди 292 образцов из кошек, 109 (37,33%) образцы были положительными на споры дерматофитов при прямом исследовании. Далее из 109 проб дерамтофиты были выделены из 103 (103/109, 94,49%) проб (). Три идентифицированных вида дерматофитов: М. canis (55,34%), М. canis.gypseum (31,07%) и T. mentagrophytes (13,59%) (). Встречаемость дерматофитов у кошек была значительно выше летом и осенью (P = 0,0039), чем весной и зимой (). У более молодых (<6 месяцев) и самцов кошек наблюдалась относительно более высокая частота дерматофитов, чем у взрослых (>6 месяцев) и самок кошек, однако это не имело существенных различий (P = 0,2106 и P = 0,5864; ).

Макроконидии M. gypseum (лактофеноловый хлопковый синий), обнаруженные у здоровых собак в Индии

Тест на чувствительность к противогрибковым препаратам

Характер противогрибковой чувствительности изолированных дерматофитов методом микроразведений в бульоне выявил минимальную ингибирующую концентрацию (МИК) 6 противогрибковых средств для 351 (кошка-103, собака-248) изолята дерматофитов.Кетоконазол (0,06–0,5 мкг/мл), итраконазол (0,03–0,5 мкг/мл) и амфотерицин-В (0,03–0,5 мкг/мл) показали самые низкие значения МПК по сравнению с M. canis , T. mentagrophytes и M. гипс соответственно. Кроме того, 90% изолятов M. canis , T. mentagrophytes и M. gypseum ингибировались 0,125 мкг/мл кетоконазола (МИК 90 ), 0,25 мкг/мл итраконазола 8 4 7 9142 ) и 0,125 мкг/мл амфотерицина-В (MIC 90 ) соответственно.Флуконазол и миконазол показали самые высокие значения МИК по отношению к изолятам, указывающим на устойчивость к противогрибковым препаратам (1).

Таблица 3

in vitro противогрибковая восприимчивость дерматофитов изолирует от кошек и собак в Западном Бенгалии, Индия

7 MIC (мкг / мл)
Итраконазол 0.03-0.5
21190
Видов (№ изолятов) Антифунгинты
Range MIC50 MIC90
Т.mentagrophytes (63) Флуконазол 4-64 16 64
Кетоконазол девяносто одна тысяча сто девяносто-одна 0. 06-2 0,125 0,25
0,125 0.25
miconazole 0.03-1 0.06 0,125
Griseofulvin 0,6-1 0,6-1917 0,125 0.25
Амфотерицин-В 0,03-1 0,03 0,125
М. Canis (165) флуконазол 4-64 16 32
Кетоконазол 0,06-0,5 0,06 0,125
Итраконазол 0,03-1 0,06 0,125
Миконазол 0. 03-0.5 0,06 0,25
Гризеофульвины 0. 06-4 0,125 0,25
амфотерицин-В 0,03-1 0,06 0,125
M. Gypseum (123) Fluconazole 8-64 16 32
0.03-1917 0.06 0,125
Itraconazole 0. 03-2 0,25 0,5
Миконазол 0.03-0.25 0,06 0,25
Гризеофульвины 0.06-2 0,125 0,5
амфотерицин-В 0,03-0,5 0,06 0,125

Дискуссия и другие., 1987 ▶; Секер и др., 2011 ▶). В подтверждение наших результатов более ранние отчеты из Индии и других стран также доступны в отношении выделения

M. canis в качестве преобладающего вида дерматофитов у собак (Seker et al., 2011 ▶; da Costa et al., 2013 ▶; Beigh и др., 2014 ▶).

Настоящее исследование выявило умеренно более высокую распространенность дерматофитов (37,33%) у здоровых кошек без каких-либо поражений кожи в восточной Индии. Подобная распространенность дерматофитии (25-35%) у бездомных кошек или кошек-компаньонов была обнаружена ранее в других странах, таких как Новая Зеландия, Иран и Португалия (Carman et al., 1979 ▶; Хосрави, 1996 ▶; Дуарте и др., 2010 ▶). Хотя более низкая распространенность (5%) дерматофитии у кошек наблюдалась в Великобритании и Италии (Patel et al., 2005 ▶; Proverbio et al., 2014 ▶). Негигиеничные условия, в которых содержались кошки-компаньоны, обнаруженные в настоящем исследовании, являются вероятной причиной более высокой распространенности дерматофитов. Microsporum canis был наиболее часто выделяемым дерматофитом у кошек-компаньонов, что согласуется с более ранними находками в Индии и во всем мире (Chatterjee et al. , 1980 ▶; Дуарте и др., 2010 ▶; Лопес и др., 2012).

Кроме того, сравнительная частота встречаемости дерматофитов у исследованных кошек и собак выявила более высокую частоту встречаемости у кошек, чем у собак, что также согласуется с более ранними выводами (Guzman-Chavez et al., 2000 ▶). Вероятно, антисанитарные условия, в которых содержались кошки, являются причиной большего количества дерматофитов, чем собаки.

Щенки группы 1 (возраст <6 месяцев) показали значительно более высокую встречаемость (P<0.05) дерматофитов, чем группа-2 (возраст старше 6 месяцев). В то же время было обнаружено относительно более высокое появление дерматофитов у кошек группы 1 (возраст < 6 месяцев), чем у кошек группы 2 (возраст > 6 месяцев), что существенно не отличалось. Более высокая восприимчивость молодых животных-компаньонов к дерматофитам также отмечалась ранее (Marchisio and Gallo, 1995 ▶; Seker et al., 2011 ▶). Это может быть связано с их слаборазвитой иммунной системой и дефицитом фунгистатической линолевой кислоты (Al-Ali et al. , 1997 ▶).

Кроме того, у самцов кошек значительно чаще встречались дерматофиты, чем у самок. Образцы не были собраны одинаково у самцов и самок, что может объяснить более высокую частоту у самцов кошек. Принимая во внимание, что не было существенной разницы в встречаемости между самцами и самками собак. Точно так же предыдущие исследования не выявили пол как фактор, способствующий возникновению дерматофитии у кошек и собак (Guzman-Chavez et al., 2000 ▶; Seker et al., 2011 ▶; Lopez et al., 2012). Встречаемость дерматофитов у кошек и собак была значительно выше летом и осенью, чем весной и зимой. Летом владельцы предпочитали держать своих собак в помещении только из-за суровой внешней погоды, что могло объяснить более высокую заболеваемость, наблюдаемую зимой в странах с умеренным климатом (English, 1972 ▶).

Кетоконазол, итраконазол и амфотерицин-В показали самые низкие значения МИК по сравнению с M. canis , T. mentagrophytes и M.гипс соответственно. В то время как флуконазол и миконазол показали самые высокие значения МПК по отношению к изолятам, что указывает на устойчивость к противогрибковым препаратам. Точно так же итраконазол с самой низкой активностью МИК (0,03-0,5 мкг/мл) и флуконазол с самой высокой активностью МИК (0-24 мкг/мл) были обнаружены в отношении изолятов дерматофитов человека (Santos et al., 2006 ▶; Araújo et al. , 2009 ▶; Aktas et al., 2014 ▶).

Таким образом, настоящее исследование определило животных-компаньонов, таких как собаки и кошки из Западной Бенгалии (Индия), как потенциальных носителей дерматофитов на их волосах или коже без каких-либо клинических симптомов.Инфекция может передаваться хозяевам, особенно среди детей, вступавших с ними в тесный контакт и смешавшихся с ними.

Благодарности

Авторы выражают искреннюю благодарность почетному вице-канцлеру Западно-Бенгальского университета наук о животных и рыболовстве (WBUAFS) за предоставление инфраструктуры. Эта работа финансировалась Индийским советом сельскохозяйственных исследований (ICAR) в рамках информационно-пропагандистской программы.

Ссылки

  • Актас АЭ; Йигит Н; Актас А, Гозубуюк СГ.Исследование активности in vitro пяти противогрибковых препаратов в отношении видов Dermatophytes, выделенных из клинических образцов, с использованием метода Е-теста. Евразийский J. Med. 2014;46:26–31. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Al-Ali G; Натур Р.М., Аль-Битар В. Распространение и распространенность поверхностных грибковых инфекций в Аммане и других городах Иордании. Мед. биол. науч. 1997; 24: 219–227. [Google Scholar]
  • Alcazar-Fuoli L, Mellado E. Текущее состояние устойчивости к противогрибковым препаратам и ее влияние на клиническую практику.бр. Дж. Гематол. 2014; 166: 471–484. [PubMed] [Google Scholar]
  • Araújo CR; Миранда К.С.; Фернандес ОФЛ; Соареш А.Дж., Сильва М.Р.Р. Тестирование чувствительности in vitro дерматофитов, выделенных в Гоянии, Бразилия, к пяти противогрибковым агентам методом микроразведений в бульоне. Преподобный Инст. Мед. Троп. С. Пауло. 2009;51:9–12. [PubMed] [Google Scholar]
  • Beigh SA; Судан Дж.С.; Сингх Р; Хан А.М., Дар М.А. Оценка микроэлементов, оксидантного/антиоксидантного статуса, витамина С и β-каротина у собак с дерматофитией.Микозы. 2014; 57: 358–365. [PubMed] [Google Scholar]
  • Carman MG; Раш-Манро FM, Картер МЭ. Дерматофиты, выделенные от домашних и диких животных. Ветеринар Новой Зеландии. Дж. 1979; 27: 136–144. [PubMed] [Google Scholar]
  • Чакрабарти А.Н.; Гош С., Бланк Ф. Выделение Trichophyton rubrum (Castollani) Sab., 1911 г. от животных. Могу. Дж. Комп. Мед. 1954; 18: 436–438. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Чаттерджи А., Сенгупта Д.Н., Чаттопадхьяй Д., Бхаттачарья Д., Датта А.К.Некоторые эпидемиологические аспекты зоофильной дерматофитии. Междунар. J. Зоонозы. 1980; 7: 19–33. [PubMed] [Google Scholar]
  • CLSI. Эталонный метод тестирования чувствительности мицелиальных грибов к противогрибковым разбавлениям в бульоне. Уэйн: CLSI; 2002. [Google Scholar]
  • da Costa FV, Farias MR, Bier D, de Andrade CP, de Castro LA, da Silva SC, Ferreiro L. Генетическая изменчивость Microsporum canis, выделенного от кошек, собак и людей в Бразилии. Микозы. 2013; 56: 582–588. [PubMed] [Google Scholar]
  • Дас К., Басак С., Рэй С.Исследование поверхностной грибковой инфекции в Западной Бенгалии: краткий отчет. Дж. Наука о жизни. 2009; 1:51–55. [Google Scholar]
  • Duarte A, Castro I, Pereira da Fonseca IM, Almeida V, Madeira De Carvalho LM, Meireles J, Fazendeiro MI, Tavares L, Vaz Y. Обзор инфекционных и паразитарных заболеваний у бездомных кошек в Лиссабонском метрополитене область, Португалия. Дж. Фелин Мед. Сур. 2010; 12:441–446. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • English MP. Эпидемиология стригущего лишая животных у человека.Бри. Дж. Дерматол. 1972; 86 (Прил.): 78–87. [Google Scholar]
  • Faggi E, Saponetto N, Sagone M. Дерматофит, выделенный от домашних хищников во Флоренции (Италия): эпидемиологическое исследование. Бык. соц. о. Микол. Мед. 1987; 16: 297–301. [Google Scholar]
  • Гупта А. К., Дель Россо JQ. Оценка прерывистой терапии, используемой для лечения онихомикоза и других дерматомикозов пероральными противогрибковыми средствами. Междунар. Дж. Дерм. 2000; 39: 401–411. [PubMed] [Google Scholar]
  • Гусман-Чавес Р.Э., Сегундо-Сарагоса С., Арнульфо Р., Оливарес С., Тапиа-Перес Г.Присутствие кератинофильных грибов с особым упором на дерматофиты на шерсти собак и кошек в Мексике и городах Нецауалькойотль. Преподобный Латиноам. микробиол. 2000;42:41–44. [PubMed] [Google Scholar]
  • Хосрави АР. Грибковая флора шерсти бездомных кошек в Иране. Микозы. 1996; 39: 241–243. [PubMed] [Google Scholar]
  • Кунду Д., Мандал Л., Сен Г. Распространенность Tinea capitis у детей, посещающих школу в Калькутте, Западная Бенгалия. Дж. Нат. науч. биол. Мед. 2012;3:152–155. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Лунд А., Братберг А.М., Насс Б., Гуддинг Р.Борьба со стригущим лишаем крупного рогатого скота путем вакцинации в Норвегии. Вет. Иммунол. Иммунопатол. 2014; 158:37–45. [PubMed] [Google Scholar]
  • Махапатра Л.Н. Изучение медицинской микологии в Индии — обзор. Индийский Дж. Мед. Рез. 1989; 89: 351–353. [PubMed] [Google Scholar]
  • Маркизио В.Ф., Галло М.Г. Дерматофиты в случаях кожных заболеваний у кошек и собак в Турине, Италия. Микозы. 1995; 38: 239–244. [PubMed] [Google Scholar]
  • Нардони С., Папини Р., Верин Р., Манчианти Ф. Исследование роли зайцев-русаков (Lepus europaeus, Pallas 1778) как переносчиков зоонозных дерматофитов.Итальянец Дж. Аним. науч. 2010;9:126–128. [Google Scholar]
  • Pang SH, Ren P, Wu XJ. Диагностика и лечение милдью кожи кроликов. Аним. науч. Вет. Мед. 2008; 4:70. [Google Scholar]
  • Патель А., Ллойд Д.Х., Лэмпорт А.И. Обследование дерматофитов у клинически здоровых кошек на юго-востоке Англии. Дж. Смолл Аним. Практика. 2005; 46: 436–439. [PubMed] [Google Scholar]
  • Proverbio D, Perego R, Spada E, Bagnagatti de Giorgi G, Pepa AD, Ferro E. Исследование дерматофитов у бездомных кошек с кожными поражениями и без них в Северной Италии. Вет. Мед. Междунар. 2014 г. http://dx.doi.org/10.1155/2014/565470. [Бесплатная статья PMC] [PubMed]
  • Rippons JW. Дерматофитии и дерматомикозы. В: Риппонс, JW, редактор. Медицинская микология, патогенные грибы и патогенные актиномицеты. 2-е изд. Филадельфия: WB Saunders; 1983. 213 стр. [Google Scholar]
  • Роберт Р., Пихет М. Традиционные методы диагностики дерматофитии. Микопатология. 2008; 166: 295–306. [PubMed] [Google Scholar]
  • Саманта И. Ветеринарная микология.1-е изд. Индия: Спрингер. П; 2015. 16 стр. [Google Scholar]
  • Сантос Д.А., Баррос МЭС, Хамдан Дж.С. Разработка метода приготовления инокулята для определения чувствительности Trichophyton rubrum и Trichophyton mentagrophytes. Дж. Клин. микробиол. 2006; 44:98–101. [Статья бесплатно PMC] [PubMed] [Google Scholar]
  • Seker E, Dogan N. Выделение дерматофитов у собак и кошек с подозрением на дерматофитоз в Западной Турции. Пред. Вет. Мед. 2011; 98:46–51. [PubMed] [Google Scholar]
  • Weitzman I, Summerbell RC. Дерматофиты. клин. микробиол. Ред. 1995; 8: 240–259. [PMC free article] [PubMed] [Google Scholar]

Возникновение различных патогенных и условно-патогенных грибов при кожных заболеваниях домашних животных: ретроспективное исследование | BMC Veterinary Research

Наш ретроспективный анализ был сфокусирован на материалах от животных с клиническими признаками кожных заболеваний ( наружный отит и различные формы дерматита) и показал, что у 56,47% обследованных животных обнаружены грибы, принадлежащие к разным морфологическим группам. были изолированы.Мы обнаружили базидиомицеты и аскомицеты, в том числе дрожжи Malassezia и Candida , условно-патогенные плесневые грибы, например. Alternaria , а также типичные дерматофиты. В группе животных, больных дерматитами, дрожжевые грибки были обнаружены в 56,2 % положительных культур ( Malassezia pachydermatis в 29,1 %, Candida spp. в 27,1 % соответственно), а дерматофиты были этиологическими агентами кожных заболеваний в 23,5 %. % случаев. Переносчиками дерматофитов являются кошки и другие животные-компаньоны, такие как кролики, морские свинки или собаки [15, 16].Кроме того, источником инфекции могут быть принадлежности животного, такие как щетки, ошейники, матрасы или места отдыха для собак и кошек, поскольку споры дерматофитов обладают высокой устойчивостью во внешней среде в течение длительного периода времени. Среди всех кожных микозов дерматофитозы относятся к зоонозам и могут передаваться от животных к человеку. В литературе описаны клинические случаи дерматофитии, протекающие одновременно у животного s и его хозяина, в т.ч. Инфекция Trichophyton rubrum , сосуществующая у человека и свиньи [23], и у собаки [24], или микроспороз, передающийся от кошки к детям [14].

Кроме того, у одного из тех, кто проводил это исследование, возник дерматофитоз после контакта с инфицированными животными при отборе проб и с клиническими образцами при повторных диагностических микологических процедурах (рис. 5). В этом случае Arthroderma benhamiae (анаморфа Trichophyton mentagrophytes ) культивировали из соскобов кожи (данные не опубликованы). Также мы заметили типичные для дерматофитии поражения кожи на предплечье у женщины, владевшей домашним кроликом, из которого мы выделили Microsporum canis .Эти результаты согласуются с литературными данными за несколько лет, описывающими инфекции Trichophyton mentagrophytes и Microsporum canis как наиболее частые этиологические агенты дерматомикоза человека в Польше [25,26,27]. Среди рода Trichophyton в нескольких случаях мы также выделили геофильный Trichophyton terrestre ( Arthroderma insingulare ). В нашем предыдущем исследовании, посвященном микологическому скринингу, мы не наблюдали присутствия спор дерматофитов в среде здоровых животных, их ошейниках или берлогах [11], однако мы не можем исключить эти источники.

Рис. 5

Tinea manuum , полученный от сотрудников лаборатории.

В ходе наших исследований мы культивировали различные плесени, такие как Aspergillus, Penicilium или Paeciliomyces . Однако при культивировании образцов шерсти животных или мазков с кожи рост таких плесеней из окружающей среды следует рассматривать как загрязнения, поскольку их многочисленные споры присутствуют в воздухе, особенно в конюшнях, сараях и помещениях для животных. Они широко распространены в окружающей среде и откладываются на волосяном покрове и поверхности кожи животных [28].

В течение 10 лет среди мицелиальных грибов, выделенных при кожных инфекциях, был также Alternaria spp . Во многих лабораториях рост колоний Alternaria трактуется как типичное заражение культуры сапрофитными грибами, так как они широко распространены в окружающей среде и колонизируют различные растения или вызывают их заболевания [29]. Споры Alternaria присутствуют в воздухе, почве и воде или на поверхности кожи человека и животных [6, 11, 29]. Однако в ветеринарии инфекции, вызываемые такими плесенями, как Alternaria alternata , особенно у лошадей, а также гиперчувствительность, часто отмечаемая у домашних животных, стали новой клинической проблемой. Несмотря на то, что Alternaria не относится к кератинолитическим грибам, присутствующие в тканях пролиферирующие грибковые элементы позволяют предположить, что он может вызывать повреждения кожи. Учитывая возрастающее число случаев, когда этот гриб был обнаружен как единственный возбудитель при поражении кожи [30], следует отметить, что растущий мицелий может механически повреждать соседние ткани.В нашей практике мы выделили грибов Alternaria в 13,8% положительных культур, и мы видели на микроскопических предметных стеклах, приготовленных непосредственно из соскобов кожи, что пороконидии Alternaria были способны прорастать и продуцировать гиф в роговом слое. В Польше такие сообщения были редкими до 2013 г., когда Dworecka-Kaszak [31] описал споры Alternaria , размножающиеся в соскобах кожи, и выделил его как единственный возбудитель грибкового дерматита у лошадей. В том же году Tyczkowska-Sieroń и Głowacka [32] описали дерматомикозы у двух шетландских пони и гончей собаки, у которых Alternaria tenuissima был этиологическим агентом. В международной ветеринарной литературе уже много лет описываются кожные грибковые гранулемы, встречающиеся у лошадей. Многими авторами отмечены случаи дерматита лошадей, при которых в образцах, полученных при биопсии кожных узелков, было обнаружено грибов Alternaria [30, 33, 34]. В некоторых клинических образцах данного исследования выделяли Alternaria как единственный инфекционный агент, вызывающий характерные для дерматомикозов поражения кожи, о чем сообщалось ранее [30]. Alternaria alternata зарегистрирован как распространенный аллерген в помещении, вызывающий различные реакции гиперчувствительности у людей, иногда приводящие к астме [29, 35, 36]. Хотя серьезные инфекции у иммунокомпетентных хозяев встречаются редко. Этот гриб может вызывать оппортунистические инфекции у пациентов с ослабленным иммунитетом, особенно у тех, кто подвергается трансплантации паренхиматозных органов или костного мозга [36]. Грибы Alternaria spp. также отмечены как возбудители глазного микоза и онихомикоза, связанные либо со стероидной терапией, либо с посттравматическими расстройствами [36].Кроме того, их присутствие в пищевых продуктах (например, в зерновых культурах, овощах, фруктах) очень распространено.

Проведенный нами анализ образцов, полученных от животных с клиническими проявлениями дерматита, не выявил случаев инфекций, вызванных диморфными грибами, так как эти облигатные возбудители эндемичны для других географических регионов. Несмотря на то, что в европейских странах (Австрия, Италия, Турция) были зарегистрированы клинические случаи гистоплазмоза [37, 38] или криптококкоза [20], представленное ретроспективное исследование подтвердило, что они обычно не обнаруживаются у домашних животных в Польше.

Помимо мицелиальных грибов, мы также сообщали об выделении рода Malassezia. Эти дрожжевые грибки обнаруживаются на различных участках здоровой кожи человека [8], а также присутствуют на здоровой коже собак [6]. Традиционно считалось, что липидозависимые виды встречаются только на коже человека, в то время как M. pachydermatis считалось ограниченным кожей животных и, в частности, плотоядных [39]. Подозревается, что другие видов Malassezia , как и M.globosa или M. sympodialis или даже липидзависимые штаммы M. pachydermatis могли быть вовлечены в развитие отита у собак, но нам не удалось их культивировать [40, 41]. Указанные виды были также выделены из кожи здоровых кошек [39, 42]. Хотя в большинстве случаев эти дрожжи носят условно-патогенный характер, они могут стать патогенными при любых изменениях микробиоты кожи, нарушениях защитных механизмов хозяина или дисбалансе гомеостаза [39, 43, 44, 45].Также дерматиты, вызванные укусами блох, особенно когда они сопровождаются реакцией гиперчувствительности, в сочетании с пищевой гиперчувствительностью или атопией, а также противомикробная или кортикостероидная терапия могут способствовать пролиферации этих дрожжей [39]. Кроме того, существуют некоторые породы собак с повышенным риском развития малассезиоза, например Вест-хайленд-уайт-терьеры, бассет-хаунды, бигли, спрингер- и кокер-спаниели или боксеры [39, 43,44,45]. У кошек инфекции Malassezia более ограничены и обычно связаны с другим основным или сопутствующим заболеванием, таким как ретровирусные инфекции [39].Дрожжи Malassezia , особенно M. pachydermatis , были также выделены из диких ластоногих и хорьков, лисиц, медведей или других видов животных, таких как свиньи, лошади, а также из птиц. Они также отмечены в литературе как этиологические агенты инфекций таких «экзотических» видов-хозяев, как носороги, верблюды, окапи или слоны [39]. M. pachydermatis по-прежнему являются наиболее распространенным грибковым агентом, вызывающим наружный отит и другие типы дерматита у домашних животных, особенно у собак, что было описано другими и подтверждено в этом отчете [39, 44, 46,47 ,48].Мы выделили этот вид из более чем 80% положительных грибковых культур мазков из ушей, взятых у пациентов с наружным отитом человек. Наши наблюдения грибкового разнообразия в клинических образцах, полученных от собак с различной кожной гиперчувствительностью, также совпадают с экспериментами Мисон-Смит и ее группы [6]. Они показали, что колонизация Malassezia слуховых проходов собак-аллергиков была значительно более обильной, чем у здоровых особей [6]. На рис. 2а и б показаны прямые микроскопические препараты, приготовленные из образцов, взятых из наружного слухового прохода двух разных собак, страдающих от наружных отитов. У одной собаки, как и у многих других, выявлен наиболее частый этиологический агент — M. pachydermatis — , а у второй особи обнаружено M. globosa бластоспор, что согласуется с литературными данными о встречаемости этого вида в слуховом проходе собак. Эти условно-патогенные дрожжи приобретают все большее значение в болезнях человека и животных [8, 9, 49, 50]. Malassezia pachydermatis была описана как причина спорадических инфекций кровотока (BSI), особенно у новорожденных с низкой массой тела при рождении и у недоношенных детей. Большинство случаев грибковой ИКТ отмечают у больных с любыми внутривенными катетерами. Другими факторами, увеличивающими риск BSI, являются искусственная вентиляция легких и лечение стероидами и антибиотиками [49]. Случаи опасной для жизни фунгемии у людей были связаны с Malassezia pachydermatis , естественным хозяином которой являются собаки. В некоторых случаях источниками заражения людей были прослежены домашние собаки, принадлежащие работникам здравоохранения [46, 47].

Некоторые дрожжи Candida , особенно C.albicans , являются эндогенными сапрофитами, но их роль в качестве условно-патогенного микроорганизма также известна и описана. Вместе с Cryptococcus neoformans эти дрожжевые грибки являются одним из наиболее важных этиологических агентов оппортунистических системных микозов, особенно у пациентов с ослабленным иммунитетом, которые в противном случае не хотели бы быть инфицированными.

Примеры медицинских состояний, связанных с иммуносупрессией, включают СПИД, изменение или транслокацию нормальной микробиоты, вызванную антибиотиками, иммуносупрессивной терапией и метастатическим раком или тяжелыми хирургическими вмешательствами. У животных-компаньонов заболеваемость системными микозами Candida не так высока, но роль этих дрожжей как возбудителя других микозов возросла. Медицинские состояния, повышающие восприимчивость животных, таких как собаки или кошки, к кандидозу, вкратце такие же, как и у людей, включая диабет, другие эндокринные расстройства и неопластические заболевания [21, 51]. Есть также предположения, что эти дрожжи могут играть роль в развитии атопического дерматита (АД) у людей, влияя на продукцию IgE, но это до сих пор полностью не объяснено и не доказано [9].

В нашей микологической лаборатории. Дрожжи рода Candida выделяют часто, преимущественно со слизистых оболочек различных животных [21]. Мы также наблюдали их рост в мазках и соскобах с кожи или в мазках из слухового прохода. В течение отчетного 10-летнего периода мы идентифицировали штаммов Candida , в основном C. albicans в 27,1% положительных грибковых культур в случаях дерматита и 19,8% положительных грибковых культур в случаях наружного отита случаев. Среди прочего, С.krusei , C. glabrata или C. parapsilosis . В этом отчете мы также показали, что количество изолятов Candida , полученных от животных-компаньонов, может быть сопоставимо или даже сходно с количеством изолятов Malassezia . Наши данные могут свидетельствовать о том, что грибы рода Candida являются важными факторами дерматита у животных, в том числе у иммунокомпетентных особей.

Опоясывающий лишай головы: предыстория, патофизиология, этиология

  • Rayala BZ, Morrell DS.Общие кожные заболевания у детей: кожные инфекции. FP Эссент . 2017 фев. 453:26-32. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Veasey JV, Miguel BAF, Mayor SAS, Zaitz C, Muramatu LH, Serrano JA. Эпидемиологический профиль дерматомикоза головы в Сан-Паулу. Бюстгальтер Дерматол . 2017 март-апрель. 92 (2): 283-284. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • webmd.com»> Fu M, Ge Y, Chen W, Feng S, She X, Li X и др. Tinea faciei у новорожденного, вызванный Trichophytontonsurans. Дж Биомед Рез . 2013 27 января (1): 71-4. [Ссылка QxMD MEDLINE]. [Полный текст].

  • Seebacher C, Bouchara JP, Mignon B. Обновления эпидемиологии дерматофитных инфекций. Микопатология . 2008 ноябрь-декабрь. 166(5-6):335-52. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Кондо М., Накано Н., Шираки Ю., Хирума М., Икеда С., Сугита Т. Китайско-японский мальчик со стригущий лишай, вызванный Trichophyton violaceum. J Дерматол . 2006 март.33(3):165-8. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Абдель-Рахман С.М., Фарранд Н., Шунеманн Э., Стеринг Т.К., Преуэтт Б., Мэджи Р. и др. Распространенность инфекций Trichophytontonsurans у школьников: исследование CAPITIS. Педиатрия . 2010 май. 125 (5): 966-73. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Мирмирани П., Такер Л.И. Эпидемиологические тенденции дерматомикоза головы у детей: популяционное исследование Kaiser Permanente, Северная Калифорния. J Am Acad Дерматол .2013. 69(6):916-21. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Hogewoning A, Amoah A, Bavinck JN, Boakye D, Yazdanbakhsh M, Adegnika A, et al. Кожные заболевания у школьников в Гане, Габоне и Руанде. Int J Дерматол . 4 апреля 2013 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Пай В.В., Ханумантайя К., Топхахан Р.С., Нандихал С.В., Киккери Н.С. Клиническое исследование Tinea capitis в Северной Карнатаке: трехлетний опыт работы в одном институте. Indian Dermatol Online J .2013 4 января (1): 22-6. [Ссылка QxMD MEDLINE]. [Полный текст].

  • Фульгенс К.К., Абибату К. , Винсент Д., Генриетта В., Этьен А.К., Кики-Барро П.С. и др. Tinea capitis у школьников на юге Берега Слоновой Кости. Int J Дерматол . 2013 апр. 52 (4): 456-60. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Thakur R. Tinea capitis в Ботсване. Clin Cosmet Investig Dermatol . 2013. 6:37-41. [Ссылка QxMD MEDLINE]. [Полный текст].

  • Лейва-Салинас М., Марин-Кабанас И., Бетллох И., Тесфасмариам А., Рейес Ф., Белиншон И. и др.Tinea capitis у школьников в сельской местности на юге Эфиопии. Int J Дерматол . 2015 июль 54 (7): 800-5. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Насир С., Ральф Н., О’Нил С., Канни Р., Ленейн П., О’Доннелл Б. Тенденции развития дерматомикоза головы у ирландского детского населения и сравнение чистки кожи головы и соскобов кожи головы как методов исследования. Педиатр Дерматол . 2013 Feb 22. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Фуллер Л.С., Чайлд Ф.Дж., Мидгли Г., Хиггинс Э.М.Диагностика и лечение стригущего лишая кожи головы. БМЖ . 2003 8 марта. 326 (7388): 539-41. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Джайн Н., Доши Б., Хопкар У. Трихоскопия при алопеции: упрощенный диагноз. Int J Trichology . 2013 5 октября (4): 170-8. [Ссылка QxMD MEDLINE]. [Полный текст].

  • Пак Дж., Ким Джи, Ким ХУ, Юн С.К., Ким С.Дж. Трихоскопические признаки выпадения волос у корейцев. Энн Дерматол . 2015 27 октября (5): 539-50. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Лакаррубба Ф., Микали Г., Тости А. Дерматоскопия или трихоскопия кожи головы. Курс Пробл Дерматол . 2015 фев. 47:21-32. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • webmd.com»> Шахин Г.О., Дадачи З., Озер Т.Т. Два случая дерматомикоза с блефаритом, вызванным Microsporum audouinii и Trichophyton verrucosum, и обзор литературы. Микозы . 13 апреля 2014 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Акбаба М., Илкит М., Сутолук З., Атес А., Зорба Х.Сравнение методов расчески, зубной щетки и ватного тампона для диагностики бессимптомного дерматофитного носительства кожи головы. J Eur Acad Dermatol Venereol . 2008 г. 22 марта (3): 356-62. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Ле М., Габриэлли С., Газави Ф.М., Алходаир Р., Шеппард Д.К., Джафарян Ф. Эффективность и достоинства метода ватного тампона для диагностики дерматомикоза головы у детей. J Am Acad Дерматол . 2020 12 января. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Фридлендер С.Ф., Пикеринг Б., Каннингем Б.Б., Гиббс Н.Ф., Эйхенфилд Л. Ф.Использование ватного тампона в диагностике дерматомикоза головы. Педиатрия . 1999 авг. 104 (2 часть 1): 276-9. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Бонифас А., Иса-Иса Р., Арайса Дж., Крус К., Эрнандес М.А., Понсе Р.М. Цитобраш-культуральный метод диагностики дерматомикоза головы. Микопатология . 2007 июнь 163(6):309-13. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Peixoto RRGB, Meneses OMS, da Silva FO, Donati A, Veasey JV. Tinea Capitis: корреляция клинических аспектов, результатов прямого микологического исследования и агентов, выделенных из грибковой культуры. Int J Trichology . 2019 нояб.-дек. 11 (6): 232-235. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Тровато М.Дж., Шварц Р.А., Яннигер К.К. Опоясывающий лишай головы: современные представления в клинической практике. Кутис . 2006 фев. 77(2):93-9. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Акил Н., Бэйбэй Х., Мустейд К., Доуи З., Эллуди С., Мернисси Ф.З. Проспективное исследование дерматомикоза головы у детей: облегчение диагностики с помощью дерматоскопа. J Med Case Rep .2018 28 декабря. 12 (1): 383. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Шехтман Р.С., Сильва Н.Д., Куарежма М.В., Бернардес Фильо Ф., Бусар А.М., Содре КТ. Дерматоскопические данные как дополнительный инструмент в дифференциальной диагностике этиологического агента дерматомикоза головы. Бюстгальтер Дерматол . 2015 май-июнь. 90 (3 Приложение 1): 13-5. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Slowinska M, Rudnicka L, Schwartz RA, et al. Волоски запятой: дерматоскопический маркер дерматомикоза головы: экспресс-метод диагностики. J Am Acad Дерматол . 2008 Ноябрь 59 (5 Приложение): S77-9. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • webmd.com»> Шемер А., Плотник И.Б., Давидовичи Б., Грюнвальд М.Х., Магун Р., Амихай Б. Лечение дерматомикоза головы — гризеофульвин по сравнению с флуконазолом — сравнительное исследование. J Dtsch Dermatol Ges . 10 апреля 2013 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Шемер А., Плотник И.Б., Давидовичи Б., Грюнвальд М.Х., Магун Р., Амихай Б. Лечение дерматомикоза головы — гризеофульвин по сравнению с флуконазолом — сравнительное исследование. J Dtsch Dermatol Ges . 10 апреля 2013 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Бханусали Д., Коли М., Сильверберг Д.И., Алексис А., Сильверберг Н.Б. Результаты лечения дерматомикоза головы у цветного населения. J Препараты Дерматол . 2012 11 июля (7): 852-6. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Елевский Б.Е. Кожные микозы у детей. Бр Дж Дерматол . 1996, июнь 134, Приложение 46:7-11: обсуждение 37-8. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Чен С., Ран Й., Дай Й., Лама Дж., Ху В., Чжан С.Прием пероральных капсул итраконазола с цельным молоком демонстрирует повышенную эффективность, подтвержденную данными сканирующей электронной микроскопии, у ребенка с дерматофитией головы, вызванной Microsporum canis. Педиатр Дерматол . 8 октября 2015 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Гупта А.К., Мэйс Р.Р., Верстег С.Г., Пираччини Б.М., Шир Н.Х., Пиге В. и другие. Tinea capitis у детей: систематический обзор лечения. J Eur Acad Dermatol Venereol . 24 мая 2018 г. [Ссылка на MEDLINE QxMD].

  • Досс Р.В., Эль-Рифайе А.А., Ради Н., Эль-Шериф А.Ю.Антимикробная чувствительность Tinea Capitis у детей из Египта. Индийский J Дерматол . 2018 март-апрель. 63 (2): 155-159. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • webmd.com»> Джон А.М., Шварц Р.А., Яннигер К.К. Керион: опоясывающий лишай головы. Int J Дерматол . 2018 57 января (1): 3-9. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Williams JV, Honig PJ, McGinley KJ, Leyden JJ. Полуколичественное исследование дерматомикоза головы и бессимптомного носительства у школьников из городских районов. Педиатрия . 1995, август 96 (2 часть 1): 265-7. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Уайт Дж. М., Хиггинс Э. М., Фуллер Л. С. Скрининг на бессимптомное носительство Trichophytontonsurans у бытовых контактов больных дерматофитией головы: результаты 209 пациентов из Южного Лондона. J Eur Acad Dermatol Venereol . 21 сентября 2007 г. (8): 1061-4. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Померанц А.Дж., Сабнис С.С., МакГрат Г.Дж., Эстерли Н.Б. Бессимптомное носительство дерматофитов в семьях детей, больных дерматофитией головы. Arch Pediatr Adolesc Med . 1999 май. 153(5):483-6. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Гупта А.К., Купер Э.А., Боуэн Дж.Е. Метаанализ: эффективность гризеофульвина при лечении дерматомикоза головы. J Препараты Дерматол . 2008 г., 7 апреля (4): 369-72. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Руна D, Gaughan JP, Aronoff SC. Гризеофульвин по сравнению с тербинафином при лечении дерматомикоза головы: метаанализ рандомизированных клинических исследований. Педиатрия .2004 г., ноябрь 114 (5): 1312-5. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Gonzalez U, Seaton T, Bergus G, Jacobson J, Martinez-Monzon C. Системная противогрибковая терапия дерматомикоза головы у детей. Кокрановская база данных Syst Rev . 2007 г., 17 октября. CD004685. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Гупта А. К., Хофштадер С.Л., Адам П., Саммербелл Р.С. Tinea capitis: обзор с упором на лечение. Педиатр Дерматол . 1999 май-июнь. 16(3):171-89. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Koumantaki-Mathioudaki E, Devliotou-Panagiotidou D, Rallis E, et al. Является ли итраконазол препаратом выбора для лечения Microsporum canis tinea capitis? Наркотики Exp Clin Res . 2005. 31 Приложение: 11-5. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Фридлендер С.Ф., Али Р., Крафчик Б. и др. Тербинафин в лечении Trichophyton tinea capitis: рандомизированное двойное слепое исследование в параллельных группах с определением продолжительности. Педиатрия . 2002 г., апрель 109 (4): 602-7.[Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Krafchik B, Pelletier J. Открытое исследование дерматомикоза головы у 50 детей, получавших 2-недельный курс тербинафина перорально. J Am Acad Дерматол . 1999 г., июль 41 (1): 60-3. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Ghannoum MA, Wraith LA, Cai B, Nyirady J, Isham N. Восприимчивость изолятов дерматофитов, полученных в ходе крупного всемирного клинического испытания тербинафина на коже головы. Бр Дж Дерматол . 2008 г., сентябрь 159(3):711-3.[Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Элевски Б.Э., Касерес Х.В., ДеЛеон Л. и др. Пероральные гранулы тербинафина гидрохлорида по сравнению с пероральной суспензией гризеофульвина у детей с дерматофитией головы: результаты двух рандомизированных, слепых, многоцентровых, международных, контролируемых исследований. J Am Acad Дерматол . 2008 г., июль 59 (1): 41–54. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Тей Х.Л., Тан А.С., Чан Ю.К. Мета-анализ рандомизированных контролируемых исследований, сравнивающих гризеофульвин и тербинафин при лечении дерматомикоза головы. J Am Acad Дерматол . 2011 Апрель 64 (4): 663-70. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Фридлендер С.Ф., Али Р., Крафчик Б. и др. Тербинафин в лечении Trichophyton tinea capitis: рандомизированное двойное слепое исследование в параллельных группах с определением продолжительности. Педиатрия . 2002 г., апрель 109 (4): 602-7. [Ссылка QxMD MEDLINE].

  • Гупта А.К., Лион, округ Колумбия. Взлет и падение перорального кетоконазола. Дж Кутан Мед Сург . 2015 июль-авг. 19 (4): 352-7.[Ссылка QxMD MEDLINE].

  • .

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.